Метод основан на У-3' экзонуклеазной актин ности термостабильной    ДНК-полимеразм <Taq, Tfl) и на флуорогённои олигопуклеотидной ДНК-пробе, способной к флуоресценции при ферментативном гидролизе (TaqMan). Олигоиуклеотнд TaqMan коньюгирован с флуоресцентной меткой и ингибитором   флуоресценции.   Данный олишнуклеотид специфически гибридизуется с мишенью ДНК или кДНК в процессе полимеразной цепной реакции (ПЦР) на каждом её цикле, располагаясь между праймерами для ПЦР, и гидролизуетен при синтезе продукта реакции.   При лом флуоресцентная метка количественно высвобождается н свободном состоянии, и уровень флуоресценции измеряется прибором (например Perkin-Llmer AB1  Prism 7700) в реальном времени в ходе ПЦР. При каждом цикле учитывается не сигнал, а увеличение сигнала С(Т), что пропорционально изначальному количеству мишени в исследуемой пробе. После окончания ПЦР полученные данные обсчитываются в сравнении со стандартной кривой, полученной при анализе известных количеств ДНК или РНК-мишени в серии разведений. Разным авторам удалось получить линейную зависимость между С(Т) и количеством    мишени в серии от 5 до 8 десятикратных разведений исследуемого образца,  в опытах но количественному определению накоплении вируса иммунодефицита кошек IF TV), корон а вируса кошек (FcoV),     возбудители  инфекционной  бурсальнои  болезни  кур  (1BDV),     ряда ретровирусов и других объектов (мРНК интерлейкинов).  Это позволяет говорить о реальном технологическом воплощении количественной ПЦР. Метол может быть применён ко всем объектам, для выявления которых успешно применяют ПЦР (вирус чумы плотоядные, коронавирус собак, вирус трансмиссивного гастроэнтерита свиней, респираторный коронавирус свиней и многие другие).   В области массовой диагностки метод ПЦР- TaqMan очень хорошо зарекомендовал себя, например, при выявлении и дифференциации нести вирусов (вирусов классической чумы свиней, пограничной     болезни   овец,  диареи   крупного   рогатою  скота).   К   главным преимуществам данного метода относятся: возможность количественной опенки, быстрота,   удобство, надежность, воспроизводимость. Отсутствует необходимость в гнездовой двухэтагшой   ПЦР    и  в анализе продуктов после окончания   ПЦР, сохраняется  возможность проводить обратную  гр;шскришшю и   ПЦР а одной пробирке. Сохраняются чувствительность и специфичность, присущие методу ПЦР, снижается риск контаминации образцов. Дополнительные расходы на   прибор для ПЦР с флуориметром и приобретение пробы TaqMan компенсируются отсутствием приборов для электрофореза и фотографирования гелей,  снижением времени реакции,   снижением   требований   к   квалификации   персонала,   увеличением количества анализируемых образцов.