Л.Н. ГАМКО, В.В. ЧЕРНЕНОК Брянская ГСХА

Одной из первостепенных задач ветеринарной науки является поиск и внедрение в производство доступных, дешевых и эффективных лекарственных средств.

Среди незаразных болезней, наблюдаемых в животноводстве, хирургические составляют более 40 %, а раны и травмы различной этиологии регистрируют у 80 % пациентов с хирургической патологией [1].

Часто травмы носят характер открытых повреждений, которые в большинстве случаев осложняются раневой инфекцией [4].

На современном этапе при лечении ран и раневой инфекции используют разные методы, способы и антимикробные средства [3, 7]. Тем не менее изыскание новых препаратов для стимуляции процессов регенерации остается актуальным.

Одно из перспективных направлений в медицине и ветеринарии - применение пластических материалов на основе биополимера коллагена.

Препараты из коллагена сочетают в себе положительные качества синтетических полимеров и тканевых трансплантантов, но лишены ряда их отрицательных сторон. От большинства искусственных полимеров коллаген отличается полным отсутствием токсичности и канцерогенности, способностью всасываться и утилизироваться в организме, образовывать прочные комплексы с рядом лекарственных веществ и стимулировать репаративные процессы в тканях за счет продуктов деградации экзогенного коллагена, разрушающегося под действием влаги и раневых протеаз [6].

Цель исследования - изучение перспектив    использования    коллагеновой пасты в качестве основы мазей, применяемых при лечения ран. Для ее получения использовали отходы кожевенного производства (обезволошенная гольевая обрезь). В качестве прототипа был выбран способ получения коллагенового материала, разработанный Ю.В. Фурманом и соавт. [5].

Состав лекарственной формы: деготь березовый - 3 части, ксероформ - 3 части, новокаин - 5 частей, коллагеновая паста - 89 частей.

Материалы и методы. Опыт проводили на 12 кроликах 12 - 14-месячного возраста, обоих полов с массой тела 3,5 -4 кг, разделенных по принципу парных аналогов на 2 группы (по 6 гол. в каждой). С помощью трафарета 20 мм х 20 мм животным наносили плоскостные кожно-мышечные раны в области холки. Предварительно готовили операционное поле: выстригали и выбривали шерстный покров, место операции обрабатывали 70%-ным раствором спирта. Операцию выполняли под местной инфильтрационной анестезией [2]. При помощи скальпеля и пинцета выкраивали кожные лоскуты указанного размера с дополнительным разрезом мышечной ткани. Гемостаз обеспечивали прикладыванием к ране марлевого тампона.

После остановки кровотечения раны инфицировали смесью почвы и навоза (в течение 5 мин). Через 2 сут в ране наблюдали острое гнойное воспаление.

У кроликов контрольной группы раны обрабатывали линиментом бальзамическим по А.В. Вишневскому, у животных опытной группы - мазью на коллагеновой основе.

Осмотр и обработку ран проводили ежедневно до полного заживления.

Результаты исследований. Через 2 сут после нанесения плоскостной кожно-мышечной раны средней площадью 401,3±4,7 мм2 у подопытных животных и 396,3±5,9 мм2 у контрольных наблюдали признаки воспалительного процесса: кожа вокруг раны была гиперемирована, отечна, местная температура повышена. Полость раны заполнена экссудатом бледно-желтого цвета.

В мазках-отпечатках раны среди бесструктурных масс, фрагментов клеток, деформированных эритроцитов располагались лимфоциты, сегментоядерные и палочкоядерные нейтрофилы, часть которых была разрушена.

При бактериологическом исследовании раневого экссудата обнаруживали: Staphylococcus aureus, Staphylococcus epidermidis, почвенные бациллы, протей и другие микробы. Уровень бактериальной обсемененности ран перед началом лечения у животных обеих групп составлял 1000 - 1500 микробных тел (м.т.) в 1 мл смыва.

На 3-й сутки лечения у подопытных кроликов наблюдали значительное уменьшение гиперемии кожи и воспалительного отека вокруг раны, что было на 2 сут раньше, чем у контрольных.

Очищение ран от гнойно-некротических масс у них происходило быстрее, чем в контроле. Появление грануляционной ткани в ранах кроликов опытной группы наблюдали на 3 - 4-е сутки после начала лечения, а контрольной - на 4 - 5-е сутки. При лечении мазью на коллагеновой основе грануляции появлялись раньше, имели красный, крупнозернистый вид. При обработке мазью Вишневского грануляции были бледными, мелкозернистыми, иногда кровоточили.

Гистологическая картина на 5-е сутки лечения ран мазью на коллагеновой основе характеризовалась развитием грануляционной ткани, увеличением количества зрелых фибробластов, скоплением гистиоцитов. В ранах животных контрольной  группы  были  в  большей  степени выражены инфильтрация лейкоцитами, плазматическими клетками, пролиферация эндотелиального компонента и фибробластов, отек стромы.

Начало активной эпителизации краев раны наблюдали на 8-е сутки после начала лечения. Площадь ран у кроликов опытной группы сокращалась в среднем на 58,6±0,9 % и составляла 166,3±3,8 мм2 (Р < 0,001), причем площадь раны за сутки уменьшалась в среднем на 13,7±0,2 %. У животных контрольной группы в этот период средняя площадь раны равнялась 248,7+6,9 мм2 (сокращалась на 37,3±0,7 %) и в среднем за сутки она уменьшалась на 8,4±0,2 %. На 12-е сутки лечения средняя площадь ран у подопытных животных составляла 51,0±2,0 мм2 (сократилась на 87,3±0,8 %), полное заживление наблюдали на 14 - 15-е сутки.

У животных контрольной группы полное заживление ран наблюдали на 20-е сутки (см. таблицу).

Уровень бактериальной обсемененности ран при лечении мазью Вишневского в первые 3 дня не изменялся, к 5-му дню лечения снизился до 700 - 900 м.т. в 1 мл смыва.

При лечении ран мазью на коллагеновой основе на 3-й сутки лечения количество микробных тел в 1 мл смыва было в пределах 700 - 1000, к 5-м суткам снижалось до 400 - 500 в 1 мл и сохранялось на этом уровне при последующих исследованиях.

Анализ гематологических результатов исследований показал, что в течение первых 3-х суток после травмы в крови кроликов обеих групп содержание эритроцитов

Планиметрическая характеристика заживления кожно-мышечных ран кроликов

и гемоглобина снижалось до уровня, не выходящего за пределы физиологической нормы, что можно объяснить развитием послеоперационного стресса.

Увеличение количества лейкоцитов (умеренный лейкоцитоз), нейтрофилию со сдвигом ядра влево и моноцитоз наблюдали в течение 5 сут после нанесения травмы, что указывает на хорошую реакцию органов гемопоэза на патологический раздражитель. Показатели белой крови нормализовались у кроликов опытной группы на 7-е сутки лечения, у животных контрольной группы - на 11 -е сутки.

При биохимическом анализе крови обнаружили снижение общего белка в плазме крови. Гипопротеинемия сопровождалась понижением уровня альбуминов с одновременным увеличением глобулинов, что расценивается как характерное проявление защитных механизмов организма при травме. Уровень общего белка, а также соотношение белковых фракций приближались к исходным показателям у всех кроликов к 11-м суткам лечения.

Заключение. Применение мази на коллагеновой основе способствует улучшению процесса заживления гнойных ран у кроликов. Коллаген во второй фазе раневого процесса стимулирует регенерацию тканей, усиливает пролиферацию фибробластов и эпителизацию раневого дефекта, способствует сокращению сроков заживления ран на 26,5 % по сравнению с контролем.

ЛИТЕРАТУРА

1. Бурденюк А.Ф., Власенко В.М. Хирургия в промышленном свиноводстве. - Киев: Вища школа, 1985.

2. Веремей Э.И., Власенко В.М., Елисеев А.Н. и др. Оперативная хирургия с основами топографической анатомии. - Минск: Урожай, 2001.

3. Давыдов Ю.А., Ларичев А.Б. Вакуум-терапия ран и раневой процесс. - М., Медицина: 1999.

4. Стручков В.И., Григорян А.В., Гостишев В.К. Гнойная рана. - М.: Медицина, 1975.

5. Фурман Ю.В., Сеин О.Б., Сеин Д.О. и др. Способ получения коллагена из отходов кожевенного производства // Пат. на изобр. №2173709 С1, 2000 .

6. Хилькин A.M., Шехтер А.Б., Истранов Л.П. Коллаген и его применение в медицине. -М.: Медицина, 1976.

7. Perrin M. Insuffisance Veineusse Chronique des Members Inferieurs Medsi. McGraw-Hill (eds). 1990.

журнал "Ветеринария" №3 2007