А.В.КАЗАРНИКОВА Ростовский отдел СКФ ЦПС

Восстановление запасов осетровых рыб - одна из важнейших проблем современного искусственного воспроизводства, которую можно решить при использовании индустриальных методов выращивания жизнеспособного посадочного материала. В последнее время широко распространено выращивание осетровых рыб с высокой плотностью посадки в установках замкнутого водообеспечения (УЗВ). Возможность регулирования параметров водной среды, грамотное управление системой и поддержание здоровья рыб с учетом санитарно - ветеринарных мероприятий в условиях УЗВ, позволяют вырастить не только жизнеспособную молодь, но и получать качественную товарную продукцию.

При выращивании в аквакультуре у осетровых рыб отмечены инфекционные (вирусные, бактериальные, грибные), инвазионные и незаразные болезни. Мы остановимся на наиболее опасных из них. Широко распространенным и изученным является заболевание белого осетра, вызываемое иридовирусом (WSIV). Впервые в аквакультуре его зарегистрировали в 1988 г. (S.E. LaPatra et al., 1994, 1998). По классификации МЭБ оно относится к опасным болезням рыб. За последние годы возбудитель выявили у белого осетра, а похожие вирусные агенты - у русского, сибирского, атлантического и озерного осетра, белого и американского лопатоноса.

Вирус поражает эпителий кожи и жабр, может вызывать массовую гибель (более 90%) молоди до года (R.P. Hedrick et al., 1990; S.E. LaPatra et al., 1999; O.N. Bauer et al., 2002). При этом наблюдают нарушение дыхания и осморегуляции, часто осложняющиеся вторичной бактериальной инфекцией. Возбудитель специфичен для осетровых рыб. Попытки выделить его на культурах клеток других видов рыб были неудачны (R.P Hedrick et al., 1991b). Возможно горизонтальное (от рыбы к рыбе) и вертикальное (через половые продукты к рыбе) распространение инфекции. Профилактические мероприятия - обработка оплодотворенной икры йодоформом, выращивание молоди старше одного года, снижение стрессовых воздействий (повышенной плотности посадки, резких перепадов температур, хэндлинга) (S.E. LaPatra et.al., 1994; К. Metcalf and P. Zajicek, 2000).

Аденовирус белого осетра (WSAV) поражает эпителий слизистой кишечника и вызывает летаргию, анорексию, истощение, возможна гибель (< 50%) молоди до года (R.P. Hedrick et al., 1985; F.S. Conte et al., 1988). WSAV отличается от других выделенных аденовирусов (М.Р Benk et al., 2002). После его выращивания на культуре клеток селезенки (WSS-2) подобные ему частицы регистрировали и у других видов рыб. Пути распространения возбудителя неизвестны.

Гораздо меньше информации о двух вирусах герпеса белого осетра - WSHV-1 и WSHV-2. Первый заражает молодь (<10 см), при этом потери составляют > 90%, вызывает поражения эпидермиса кожи и слизистой в области губ (S.E. LaPatra et al., 1993), а второй - образование язв на поверхности тела у молоди и старших возрастных групп. О поражении этими вирусами других видов рыб ничего не известно.

У белого осетра обнаружили вирусы, вызывающие значительную гибель среди лососевых рыб: инфекционного некроза гемопоэтической ткани (IHNV) и инфекционного некроза поджелудочной железы (IPNV) (S.E. LaPatra et al., 1995). Распространение инфекции происходило вертикально, горизонтально и через паразитов(копеподу и пиявку).

Рыбы старшего возраста обычно не болеют, но являются носителями вирусов. Дикие производители считаются главным источником возбудителей инфекции. Благоприятной для развития вирусных болезней является температура 17 - 19 °С, но они также могут проявляться и при 9-23 °С. Способов лечения при вирусных инфекциях осетровых рыб пока не разработано.

Накопление органических веществ в бассейнах при выращивании в УЗВ стимулирует рост численности микроорганизмов (М.Ю. Котлярчук, 2004). В аквариальной научно - экспериментальной базе ЮНЦ РАН у осетровых рыб выделили 67 культур условно-патогенных микроорганизмов, в том числе 42 штамма из воды и 25 - от рыб. В состав последних входили виды: Aeromonas hydrophila, Aeromonas sp., Flavobacterium aquatice, Plesiomonas shigelloides, Plesiomonas sp. При ослаблении организма хозяина и неблагоприятных условиях среды (хэндлинг, плохое качество воды и др.) условнопатогенные бактерии способны вызывать инфекционный процесс в латентной и острой формах (Л.Н. Юхименко, 1979; А.Е. Каховский, 1991; СВ. Бормотова и др., 1995; R. Francis-Floyd, 2000).

Гибель осетровых регистрировали в реке Харрисон (Колумбия, США) от Aeromonas hydrophila (S. Raverty, 1999). По данным R.W. Horsley (1973, 1977), R.A. Crouse-Eisnor et al. (1985), T. Sakata (1989), G.H. Hansen, J.A. Olafsen (1999), Л.Н. Юхименко (2003), на поверхности тела пресноводных рыб преобладали бактерии группы Aeromonas, а затем Vibrio. Л.В.Ларцева и соавт. (2002, 2004) в дельте Волги отмечали на поверхности тела рыб бактерии, относящиеся к родам Aeromonas, Enterobacter, Pseudomonas. В Иране A. hydrophila считают потенциально опасным патогеном для молоди персидского осетра (M.R. Kabassi, M. Soltani, 2001). По сообщению O.N. Bauer et al. (2002), бактерии рода Flavobacterium выделили с поверхности тела молоди. У осетровых рыб при выращивании в аквакультуре и УЗВ отмечали следующие бактериальные инфекции: миксобактериоз, флавобактериоз, бактериальную геморрагическую септицемию.

В России миксобактериоз осетровых рыб внесен в перечень карантинных и особо опасных болезней. Его вызывают бактерии родов Flexibacter, Cytophaga и Sporocytophaga. Клинические признаки -кровоизлияния и полиморфные повреждения на поверхности тела, кровоизлияния у основания жучек, разрушение эпителия жаберных лепестков, межлучевой перепонки и опорных элементов плавников. Заболеванию подвержены все возрастные группы, но больше всего молодь. Наличие вторичной инфекции, как правило, осложняет течение миксо-бактериозов (В.Г. Енгашев и соавт., 2005).

Бактериальная геморрагическая септицемия поражает все виды осетровых рыб в любом возрасте при нарушении технологии выращивания. Ее вызывают бактерии рода Aeromonas, выделяющиеся из посевов паренхиматозных органов в монокультуре, или ассоциации с другими микроорганизмами (Bacillus, Micrococcus, Plesiomonas и др.) (Л.Н. Юхименко, 1987; Л.Н. Юхименко и соавт., 1979, 2000; Л.В. Ларцева и соавт., 2002). Гибель рыб может быть <70%. Клинические признаки - точечные кровоизлияния на поверхности тела, бледные, анемичные жабры, экзофтальмия.

Несмотря на большое разнообразие клинических проявлений бактериальных болезней, их диагностика разработана. Для борьбы с ними используют хлорамин Б, марганцовокислый калий, перекись водорода, тетрациклин, окситетрациклин, нитрофуразон и др. Распространение их происходит горизонтально, а развитию способствуют высокое содержание органических веществ в воде и температура последней, плотные посадки, некачественные корма, хэндлинг, травматизация и др.

Перечисленные стресс-факторы могут вызывать и микозы осетровых, возбудителями которых являются грибы порядка Saprolegniales. Обычно сапролегниоз развивается на фоне резкого снижения защитных сил организма. Клинические признаки его - белый ватообразный налет на поверхности тела. Инфекция известна в рыбоводных хозяйствах многих стран мира и России, так как ее возбудитель широко распространен в природе.

Сапролегниоз осетра и белуги мы отмечали в 2005 г. в бассейнах аквариального комплекса ЮНЦ РАН после пересадки рыбы из естественных водоемов. Проведенная вовремя обработка метиленовым синим позволила купировать болезнь и не дать распространиться в другие бассейны. В этот период рыба была обеспечена полноценными кормами, витаминами, гидрохимические показатели соответствовали норме.

В условиях УЗВ представляют опасность и паразитарные болезни. Из 92 видов паразитов, отмеченных у осетровых рыб юга России, большинство встречается у широкого круга рыб (Е.В. Шестаковская, 1981; Н.И. Сыроватка, 1985; Е.В. Шестаковская и соавт., 1987, 2000; А.В. Казарникова и соавт., 2005). При выращивании осетровых рыб в аквакультуре фауна паразитов представлена единичными представителями классов -Parasitomonada (Mastigophora), Cyrtostomata, Hymenostomata (Ciliophora), Coelenterata, Amphilinida (Plathelminthes), Nematoda (Nemathelminthes), Acanthocephala (Acanthocephales), Hirudinea (Annelida). Наиболее патогенны из них Trichodina nigra, T. rectangli, Т. pediculus, Т. acuta, Trichodinella epizootica, а также Polypodium hydriforme, Diclybothrium armatum, Diplostomum spathaceum, D. paracaudum, Piscicola geometra, Ergasilus sieboldi, Argulus foliaceus. Специфичными для осетровых являются только 2 вида - Polypodium hydriforme и Diclybothrium armatum (Е.В. Шестаковская и соавт., 2000).

В УЗВ заболевания чаще всего вызывают простейшие (родов Costia, Ichthyophthirius, Epistylis, Apiosoma, Trichodina, Trichodinella), моногенеи (Diclybothrium), ракообразные (Ergasilus, Argulus). Цикл их развития прямой (без участия промежуточных хозяев). Заражение может происходить от рыбы к рыбе, через воду, рыбоводное оборудование. При оптимальных условиях окружающей среды и стабильном состоянии хозяина регистрируют единичное число паразитов. У ослабленных особей инвазия может нарастать в считанные дни. Диагноз ставят на основании клинических признаков, эпизоотологических данных и непосредственного обнаружения большого количества паразитов. Профилактические мероприятия включают оптимизацию условий выращивания и недопущение контакта с больными рыбами.

При выращивании осетровых рыб в системе УЗВ необходим контроль качества воды. Они особенно чувствительны к содержанию кислорода (< 8 мг/л), большое значение имеют окисляемость воды, рН и другие факторы. В последние годы в системах УЗВ активно используют искусственное насыщение воды жидким кислородом, но при этом необходимо контролировать насыщение воды газами. Перенасыщение ими воды (азотом > 108 %, кислородом >250 %) может привести к развитию газопузырьковой болезни (П.П. Головин, 1984). У молоди она проявляется накоплением газа в плавательном пузыре, но чаще в желудке и кишечнике. У старших возрастных групп многочисленные пузырьки газа образуются под кожей на теле, плавниках, полости рта, глазах, на жаберных крышках и дугах. Меры борьбы носят предупредительный характер.

Фактором передачи возбудителей болезней может служить корм, а недостаток специфических элементов в нем увеличивает восприимчивость рыб к инфекциям.

При алиментарных болезнях отмечают вздутие брюшка вследствие переполнения кишечника непереваренными пищевыми компонентами. Печень и селезенка увеличены, бледной окраски, почки кровенаполнены. Регистрируют васкулярно-гидропическую дистрофию печени. Стенки кишечника сильно истончены, слизистая воспалена, кровеносные сосуды расширены и кровенаполнены. У рыб развиваются анемия, лимфопения, необратимые изменения в клетках белой и красной крови: дегенеративные изменения эритроцитов, полихромазия и анизоцитоз (-Е.В. Брагина и соавт., 1978; Н.А. Головина исоавт., 2000).

Правильное использование лекарственных препаратов и дезинфицирующих средств - составная часть успешного выращивания рыб в УЗВ. При большинстве инфекций и инвазий рыб можно лечить с помощью антибиотиков, органических красителей, медикаментов или дезинфектантов. Необходимо отметить, что в УЗВ нельзя проводить лечебные ванны с антибиотиками, так как последние могут сильно повредить биофильтр.

При бактериальных болезнях проводят тест на чувствительность к антибиотикам, после чего лекарственный препарат дают рыбе с кормом. Н.Н.Найденова и Т.Н. Мордвинова (2002) в опытах с аретемией показали, что науплии могут накапливать лекарственные вещества (антибиотики) в достаточных количествах. Поедание таких "лечебных живых кормов" способствует снижению инфекции.

Для профилактики и лечения рыб при бактериальных болезнях в УЗВ можно использовать пробиотики, не оказывающие негативного воздействия на биофильтр (Т.М. Новоскольцева и соавт., 2000). К их числу относятся: Steptococcus faecium M-74 - продуцирует молочную кислоту, способствует резкому сокращению численности болезнетворных бактерий; обладает адгезивными свойствами в эпителии желудочно-кишечного тракта рыб;

лактиферм - способствует ускорению темпа роста рыб при добавлении его в корм сому, карпу, линю;

аскоген - увеличение темпов роста и сопротивляемости организма к болезням при выращивании калифорнийской форели;

субалин - создан на основе микробной культуры Bacillus subtilis, обладает иммуностимулирующим действием, подавляет рост аэромонад и нейтрализует бактериальные токсины. Широкие производственные испытания, проведенные нами в крупных рыбоводных хозяйствах Азовского бассейна, и литературные данные (Л.Н. Юхименко и соавт., 2000; Т.А. Ноякшева и соавт., 2002;  Е.С. Трифонова и соавт.,  2003) показали его положительное влияние на организм осетровых рыб, улучшение усвоения кормов и подтвердили возможность использования субалина как кормовой добавки, альтернативной кормовым антибиотикам;

субтилис - разработан на основе бактерий Bacillus subtilis и Bacillus licheniformis, обладающих четко выраженной антагонистической активностью к широкому спектру патогенных и условнопатогенных микроорганизмов. По предварительным материалам В. subtilis в условиях УЗВ повышает иммунный статус организма рыб и служит антагонистом по отношению к условнопатогенной микрофлоре.

Для проведения антипаразитарной обработки используют формалин, малахитовый зеленый, метиленовый синий, фиолетовый "К", бриллиантовый зеленый. В УЗВ рыбу подвергают кратковременной обработке раствором лекарственного препарата, после чего его незамедлительно сливают в канализационную сеть и исключают из водообмена. Все эти препараты оказывают негативное действие на биофильтр, и их нельзя использовать для длительной обработки. Для последней можно применять поваренную соль - эффективное средство при антипаразитарной обработке и для снятия стресса при выращивании осетровых рыб. Препарат не оказывает негативного действия на био-фильтр.

журнал "Ветеринария" №3 2007