Дерматомикозы лошадей
Дерматомикозы лошадей представлены в основном следующими видами патогенных грибов: Trichophyton equinum, Trichophyton mentaqrophytes, Microsporum canis, Microsporum equinum и Microsporum qypseum.
Самым надежным способом определения вида дерматофита является микроскопирование патологического материала от больной лишаем лошади и выделение гриба в чистую культуру с последующей идентификацией по справочникам (1,2.3).
Определение вида гриба для не специалиста-миколога представляет некоторые трудности,
С целью облегчения работы ветеринарного врача, имеющего дело с больной стригущим лишаем лошадью, необходимо придерживаться определенных правил.
Отбор патологического материала и его микроскопирование
При появлении на коже лошади очагов поражения, имеющих округлую или овальную форму размером от доли сантиметра до сливающихся очагов, покрытых корками, следует предположить наличие дерматомикоза. Округлые или овальные поверхностные очаги с тонкими желтоватыми корочками свидетельствуют о микроспорийном процессе Плотные асбестовидные корки, часто сливающиеся, грубой консистенции свидетельствуют о наличии трихофитии лошадей.
Для микологического анализа берут соскобы по периферии свежих очагов, не подвергавшихся медикаментозному лечению Патологический материал (корочки, чешуйки, пораженные волосы, выдернутые пинцетом с луковицей волоса) помещают в бумажный пакетик и снабжают этикеткой (хозяйство, дата, возраст, пол и кличка лошади). В таком бумажном пакетике патологический материал сохраняется долгое время, подсыхает и не портится. Держать патологический материал в пробирках, колбах или баночках закрытых крышками или пробками не рекомендуется, т.к в такой емкости создаются условия повышенной влажности, появляются плесень или бактерии. В этом случае выделение чистой культуры гриба затруднительно.
25
 
Для проведения микологического анализа патологический материал из пакетика пересыпают в стерильную чашку Петри на темном фоне стекла, т е. под чашку Петри подложить темную бумагу (например, от фото).
Следующий этап - приготовление препарата из патологического материала и его посев
На предметное стекло в каплю 10-20% щелочи {КОН или NaOH) препаровальной иглой помещают обрезки пораженных волос с луковицей длиной 1-3 мм, чешуйки, корочки, которые предварительно размельчают глазным профломбированным скальпелем или препаровальной иглой. После этого стекло с каплей щелочи; содержащей патологический материал, прогревают на пламени горелки до появления белого ободка по краям капли, свидетельствующим о выпадении кристаллов щелочи, добавляют водный раствор 50% глицерина, накрывают предметным стеклом и рассматривают под микроскопом при малом (хЮ, х20) увеличении, а затем при большом (х40). Наличие в чешуйках и волосах спор (артроспор) свидетельствует о заболевании лошади стригущим лишаем.
Определение вида возбудителя
Для определения вида возбудителя производят посев на среду накопления и селективные среды С этой целью используют Суслоагар, мясопептонный агар и агар Сабуро, с добавлением никотиновой кислоты и без. Рост на агаре Сабуро без никотиновой кислоты свидетельствует о выделении Trichophyton mentaqrophytes из патологического материала, а с никотиновой кислотой Trichophyton equinum. Одновременно может быть в посевах проявляться микроспория (Microsporum canis или Microsporum equinum).
Культурально-морфологические свойства возбудителей трихофитии и микроспории лошадей
Trichophyton equinum
Крупноспоровый эктотриис, споры 5-8хЗ-4: образуют в основании волоса чехол. Молодые 7-дневные колонии совершенно гладкие, ровные. Далее становятся складчатыми, бархатисто-пушистыми, беловатыми- Края колонии бахромчатые, погруженные в субстрат, колонии желтовато-оранжевые, в зрелых и старых культурах - розовато-красноватые.
Мицелий септированый, диаметр 2,5 -3,5 мкм, ветвится под прямым углом с завитками и редкими интерколярными хламидоспорами 3,9-10x3-4 мш. Микроконидии многочисленные округлые или продолговатые. Макроконидии встречаются редко, чаще булавовидные.
Trichophyton mentaqrophytes
Колонии быстрорастущие. В начале колонии бархатистые, затем мучнистые, широкие, плоские; в центре небольшое углубление или бугорок, беловато-желтоватые или коричневые. Мицелий ровный, ветвистый, поперек 2,5-3,2 мкм. Микроконидии круглые или грушевидные 1,5-4,5 мкм. В зрелых культурах могут быть спирали. Макроконидии веретенообразные, 12-30x5-8 мкм. Хламидоспоры округлые 4-10 мкм, немногочисленные.
Microsporum canis
Колонии гриба быстрорастущие, рыхло-пушистые, серовато-белые, иногда желтовато-розовые. Зрелые культуры более мучнистые, иногда с неглубокими складками Обратная сторона колонии темно-коричневая. Мицелий 2,5 - 3,5 мкм ровный, иновда бамбукообразный Макроконидии 40-90x7-12 мкм состоят их 4-12 клеток. В зрелых культурах встречаются округлые интеркалярные хламидоспоры диаметром 8-12 мкм. Микроконидии округлые или грушевидные 3-6x2,6-3.5 мкм встречаются непостоянно.
Microsporum equinum
Колонии    кожистые,    гладкие,    радиарно-складчатые.    Цвет   колонии    серовато-желтоватый    или темновато-коричневый.    Мицелий    ровный,    ветвящийся,    иногда    с    бамбуковидными    вздутиями Микроконидии грушевидные, редкие хламидоспоры по ходу мицелия и на концах плетей. Макроконидии короткие узкие 20-25x2-18 мкм.
26
 
Microsporum qypseum
Расположение в волосе по микроспорийному типу. Культуры быстрорастущие, особенно при 28°С. Колонии плоские, ровные, в начале бархатистые, позже становятся густомучнистыми от образующихся микроконидий с небольшим углублением в центре. Цвет розовато-желтоватый, край войлочный белый. Мицелий ровный, септированный диаметром 2-3 мкм, иногда ракетковидный с хламидоспорами диаметром 40 мкм; располагающимися цепочками. Микроконидии 3-5x2,5-3,5 мкм. Макроконидии бесцветные или желтоватые, умерено толстостенные, веретенообразные или цилиндрические 25-60x12-18,5 мкм, 4-6 перегородок.
Следует отметить, что, Trichophyton mentaqrophytes, Microsporum equinum и Microsporum qypseum встречаются довольно редко и не вызывают эпизоотологического процесса.
Рекомендуемые прописи питательных сред
Суслоагар
Солодовое неохмеленное сусло (полученное с пивоваренного завода) разбавляют в два раза водопроводной водой до 7° содержания Сахаров по Баллингу, устанавливают нужный рН и добавляют 2% агара. После растворения агара среду фильтруют, разливают в пробирки или колбы и стерилизуют в автоклаве 30 минут под давлением 0,5 ат. После стерилизации рН среды 6,3-6,5.
Мясопептонно-глицериновып агар с 2% глюкозы

Глюкоза    20 г
Глицерин    25 г (по весу)
Пептон    Юг
Хлористый натрий    5г
Стерильная мясная вода (разбавленная дистиллированной водой 1:2)    1 л
Агар-агар    20 г
До стерилизации рН среды 7,0-7,1.
После растворения агара среду фильтруют, разливают по пробиркам, стерилизуют под давлением 0,5 ат в течение 30 минут.
Агар Сабуро

Глюкоза    40 г
Пептон    Юг
Агар-агар    18 г
Вода водопроводная    1 л
После растворения агара среду фильтруют и разливают по пробиркам. Стерилизация под давлением 0,5 ат в течение 30 минут. После стерилизации рН среды 6,9-7,0.
Элективная среда с добавлением никотиновой кислот^!
Основная среда: глюкоза - 40 г, MgSO4 - 0,1 КН2 РО4 - 1,8 г, агар - 40 г, дистиллированная вода -1000 мл.
Среда В: никотиновая кислота 10мг. дистиллированная вода 100мл. Автоклавировать при 120°С - 15 минут,
Добавить 2 мл раствора В в 100 мл основного раствора и разлить в пробирки.
Элективная среда для дифференциации Microsporum cants от Trichophyton mentaqrophytes
Картофельный агар + индикатор Андродэ (0,0004%).
500 г очищенного картофеля мелко нарезать, добавить 1 л дистиллированной воды, варить, процедить через марлю, добавить NaCI - 5 г, дрожжи-экстракт - 2,5 г, агар-агар - 20 г, глюкоза - 20 г.