Pestis africana suum (лат.); African swine fever (англ.); Peste porcine africaine (франц.); Peste porcina africana (испан.)

Африканская чума свиней (АЧС, болезнь Монтгомери) - контагиозная болезнь, характеризующаяся лихорадкой, геморрагическим диатезом, воспалительными и некродистрофическими изменениями паренхиматозных органов. Болезнь зарегистрирована в Африке, Испании, Португалии, Франции, Бразилии и на Кубе.  Болеют свиньи всех возрастов и пород в любое время года.

                                    ХАРАКТЕРИСТИКА ВОЗБУДИТЕЛЯ

Описан Монтгомери в 1921 г. Вирус АЧС выделен в отдельное семейство.

Морфология и химический состав. Вирионы представляют собой округлые частицы, диаметром 175-215 нм, состоящие из 2-слойного икосаэдрического капсида и наружной оболочки. Нуклеоид содержит ДНК и белок и окружен электронно-прозрачным слоем Двухслойный капсид состоит из 1892-2172 капсомеров. Наружная липопротеидная оболочка вирионов имеет типичное строение и не необходима для проявления инфекционных свойств вируса. Между наружной оболочкой и капсидом имеется электронно-прозрачный слой. Плавучая плотность в CsCl составляет 1,19-1,24 г/см3, коэффициент седиментации 1800-8000 S. Инфекционность вируса сохраняется при 5°С в течение 5-7 лет, при комнатной температуре - 18 мес, при 37°С - 10-30 дн. Вирус стабилен при рН 3-10, чувствителен к жирорастворителям и инактивируется при 56°С в течение 30 мин. ДНК не обладает инфекционностью. В вирионах вируса АЧС обнаружено 54 полипептида. С вирионами ассоциировано несколько ферментов, необходимых для синтеза ранних иРНК.

Вирус АЧС размножается в цитоплазме клеток, однако функция ядра также необходима для его репродукции. В инфицированных клетках обнаружено 106 вирусспецифических белков, из которых 35 синтезируются до начала репликации вирусной ДНК (ранние белки) и 71 после репликации ДНК (поздние белки). Вирионы созревают в цитоплазме и приобретают наружную оболочку при почковании через цитоплазматическую мембрану. Вирус размножается в организме свиней и клещах рода Ornithodoros. В организме свиней вирус реплицируется в моноцитах, макрофагах и ретикулоэндотелиальных клетках. У самок клещей вирус сохраняется более 100 дн, передается трансовариально и трансфазно.

Известно, что проникновение вирусов в организм сопровождается образованием ВНА. Исключение представляет прежде всего вирус АЧС. Инфицирование этим вирусом не индуцирует у животных синтез ВНА, хотя в сыворотке крови выявляют КСА, ПА и типоспецифические задерживающие ГА AT. Отсутствие ВНА обусловливает неспособность организма связывать и элиминировать вирус, что, в свою очередь, приводит к исключительно высокой летальности инфицированных животных. С другой стороны, отмеченный парадоксальный феномен сводит на нет, попытки создания эффективной вакцины, поскольку аттенуированные штаммы вируса вызывают у свиней хроническое течение болезни и длительное вирусо-носительство, что весьма опасно в эпизоотологическом отношении. Вирус АЧС обладает отдельными характеристиками иридо- и поксвирусов. Является единственным представителем уникального семейства ДНК кодирует свыше 100 полипептидов, из которых более 30 обнаружено в препаратах очищенного вируса. Капсид образуют, в основном, полипептиды с мол.м. 73 и 37 кД С капсидом ассоциирована и ДНК-зависимая РНК-полимераза, участвующая в начальных стадиях репродукции вируса. ДНК представляет 2-нитчатую структуру мол. м 10О10бД, состоящую из 170 тыс. п.о. длиной 58 нм.

Вирус АЧС имеет 20-гранную форму, величина его 175-215 нм, покрыт 2-слойной липопротеиновой оболочкой, имеющей антигенное родство с тканями хозяина. Далее располагается 3-слойный капсид из периодически размещенных капсомеров, внутри находится нуклеопротеид из плотных фибрилл, содержащих ДНК. Поверхностная оболочка и капсид содержат большое количество липидов. Секвенирование ДНК показало, что вирус АЧС занимает промежуточное положение между поксвируами и иридовирусами и принадлежат к независимому семейству вирусов. Выявлены различия между отдельными изолятами и вариантами вируса, а также механизм и последовательность синтеза вирус-специфических белков, их роль в патогенезе болезни. В составе вирионов и инфицированных клеток установлено 28-37 вирусспецифических белков по другим данным, зарегистрировано 100 структурных и 162 неструктурных вирусспецифических белков м.м. 11,5-245 кД. Считают, что ранние белки синтезируются с концевых участков ДНК, а поздние - с центральной её части. В составе вириона выявили ДНК-полимеразу, протеинкиназу и другие ферменты, которые необходимы для раннего синтеза вирусспецифических структур.

Вирус АЧС неоднороден. Он представляет собой гетерогенную популяцию, состоящую из клонов, отличающихся по признакам гемадсорбции, вирулентности, инфекционности, бляшкообразования и антигенным свойствам. По биологическим свойствам вирус, используемый для экспериментального заражения свиней, отличается от изолятов вируса, выделенных позднее от этих же свиней. В 1991 г. опубликовано сообщение о современных данных по архитектуре морфогенеза и распределению структурных полипептидов в вирионе АЧС. Р.М.Чумак  высказал гипотезу о гибридном происхождении вируса АЧС, предками которого явились вирусы группы оспы и один из иридовирусов насекомых. По мнению автора, этот вирус должен быть выделен в отдельное семейство, куда позднее будут отнесены и другие вирусы.

Устойчивость. Вирус АЧС исключительно устойчив в широком диапазоне температур и рН среды, включая высушивание, замораживание и гниение Он может оставаться жизнеспособным в течение длительного времени в фекалиях, крови, почве и на различных поверхностях - деревянных, металлических, кирпичных В трупах свиней инактивируется не раньше чем через 2 мес, в кале - в течение 16 дн, в почве - за 190 дн, а в холодильнике при -30-60°С - от 6 до 10 лет Солнечные лучи независимо от инфицированных объектов (бетон, железо, дерево) полностью инактивируют некоторые штаммы вируса АЧС через 12 ч. В условиях свинарника при 24°С естественная инактивация вируса может происходить максимум за 120 дней Оптимальным для дезинфекции инфицированных помещений оказался 0,5%-ный р-р формалина.  Замораживание не влияет на биологическую активность вируса, но является начальной стадией повреждения генома. Высушивание вируса без стабилизатора вызывает потерю его инфекционности. В мясе инфицированных свиней и копченых окороках он сохраняется 5-6 мес Продолжительную устойчивость возбудителя в крови, экскретах и трупах учитывают при планировании ветеринарно-санитарных мероприятий Поскольку вирус сохраняет жизнеспособность в инфицированных свинарниках в течение 3 мес, именно этому сроку соответствует экспозиция, после которой разрешается завоз новой партии свиней. На устойчивость вируса влияют состав и рН среды, в которой он суспендирован, содержание белка и минеральных солей, степень гидратации, природа исследуемого вируссодержащего материала. При 5°С он сохраняет активность в течение 5-7 лет, при хранении в условиях комнатной температуры - до 18 мес, при 37°С -10-30 дн. При 37°С инфекционность его снижалась на 50% в течение 24 ч в среде с 25% сыворотки и в течение 8 ч в среде без сыворотки. При 56°С небольшое количество вируса сохраняло инфекционность более 1 ч, поэтому применяемой на практике 30-мин инактивации сыворотки при 56°С недостаточно для разрушения возбудителя При 60°С он инактивировался в течение 20 мин Вирус исключительно устойчив как в кислой, так и в щелочной среде Большинство дезинфицирующих веществ (креолин, лизол, 1,5%-ный р-р NaOH) не инактивирует его.

 Наибольшее вирулицидное действие на него оказывают хлорактивные препараты (5%-ный р-р хлорамина, гипохлориты натрия и кальция с 1-2% активного хлора, хлорная известь) при 4-часовой экспозиции. Гидроксид натрия в виде 3%-ного р-ра рекомендуется при дезинфекции только в горячем виде (при температуре 80-85°С). При дезинфекции особое внимание обращают на тщательную механическую очистку и промывание горячей водой, так как органические вещества навоза могут снижать эффективность дезинфекции.

АГ структура. Сложная. Возбудитель содержит групповые КС-, преципитирующий и типовой ГАд антигены. Вопросы о сущности инфекционного АГ, индуцирующего образование ВНА, остается до сих пор открытым. Иначе вопрос обстоит с АГ, индуцирующими образование AT, задерживающих гемадсорбцию. Сыворотки с анти-ГАд свойствами широко используются всеми исследователями, изучающими проблему АЧС.  

АГ вариабельность и родство. На основании задержки гемадсорбции выделено две АГ А- и В - группы (типы) и одна подгруппа С вируса АЧС. В пределах А-, В -групп и С -подгруппы выявлено много серотипов этого возбудителя.

С помощью иммунопробы и РЗГА установлено по 7 референс-штаммов каждой группы. Методом иммуноблоттинга с монАТ выявлено 6 групп, а рестрикционным анализом - 4 группы и 3 подгруппы. Имеются сообщения о высокой изменчивости вируса АЧС по антигенности, вирулентности и другим свойствам, а также о существовании смешанных популяций его, которые трудно поддаются аттенуации. На примере шт. Керовара-12, выделенного от бородавочника в Танзании, показана типовая гетерогенность популяции АЧС, особенности вируса взаимосвязь с патологическим и иммунологическим процессами в организме зараженных свиней. Большинство изолятов, выделяемых во время эпизоотии от домашних свиней в Африке, имели различные ГА АГ. Главный АГ - при диагностике с помощью ELISA оказался стабильным. АГ различия между шт. вируса АЧС невозможно определить с помощью твердофазного ИФА, РДП и ИЭОФ, так как этими методами выявляются лишь общие для всех шт вируса АЧС АГ. Это удается сделать лишь методом истощения культурального АГ вируса АЧС гетеротиповой сывороткой.  Как видно из приведенных выше фактов, серологический и иммунологический пюралитет вируса АЧС - один из основных его свойств.

Локализация вируса. Вирус обнаруживают во всех органах и тканях больных животных. В крови он появляется во время первоначального повышения температуры и обнару-живается там до гибели животного в титрах от 10' до 108 ГАдзо/мл. При хроническом течении болезни титр вируса в крови быстро снижается, виремия носит прерывающийся характер При отсутствии виремии он может долго (до 480 дн) сохраняется в селезенке и лимфоузлах Точная локализация вируса при латентном течении болезни не установлена В первоначально инфицированных органах (лимфоидная ткань в области глотки) вирус сохранялся в титре около 10 ГАДда, до гибели животного Наивысшие титры его (IО8) наблюдали в тканях содержащих большое количество ретикулоэндотелиальных элементов селезенке, костном мозге, печени что согласуется с выявлением в этих тканях значительных поражений Первичным местом локализации вируса являются миндалины Присутствие его в лейкоцитах с 1-го дня инфекции свидетельствует о том, что возбудитель заносится в другие ткани лейкоцитами Появление вируса в селезенке и костном мозге через 2 дня и быстрое повышение титра вируса в этих тканях дает основание полагать, что они являются местом вторичного размножения возбудителя .

Из организма зараженных животных вирус выделяется с кровью, носовыми экскретами, фекалиями, мочой, слюной и, вероятно, через легкие с выдыхаемым воздухом. У большин-ства выживающих животных вирусоносительство практически пожизненное Периодически вирус может быть выделен из крови, лимфоузлов, легких, селезенки Из других тканей выделение его затруднительно. Вирусовыделение наступает на 2-4-й дн после появления лихорадки. Стресс-факторы способствуют обострению инфекции и выделению вируса во внешнюю среду. При этом сезонность вирусовыделения связана с опоросами. В клещах Ornithodoas вирус АЧС размножается в кишечнике и затем распространяется в слюнные железы и репродуктивные органы. Клещи могут оставаться персистентно инфицированными и передавать вирус в течение 3-х лет, наряду с бородавочниками они создают перманентный резервуар вируса для домашних свиней. Клещи способны передавать его трансовариально и трансфазово. Концентрация вируса в клещах выше, чем у свиней-вирусоносителей

Антигенная активность. В сыворотках реконвалесцентов появляются преципитирующие, КС и задерживающие ГАд AT, не влияющие на ЦПД вируса ПА и КСА не являются типоспецифическими, они общие для всех шт, тогда как AT, задерживающие РГАд, строго типоспецифичны и используются для типирования вируса АЧС. КСА и ПА не связаны с образованием иммунитета. ВНА не образуются. Сыворотки животных-реконвалесцентов специфически задерживают ГАд в культурах, инфицированных гомологичным вирусом АЧС. Титр таких AT достигает максимума через 35-42 дней после клинического выздоровления животных. Вирус АЧС не вызывает формирование ВНА и гуморальные компоненты иммунной реакции не имеют большого значения Неспособность вырабатывать ВНА против вируса АЧС, обусловлена свойствами самого возбудителя.

Взаимодействие вируса с AT. Одна из причин недостаточной изученности иммунологии АЧС - отсутствие нейтрализации вируса AT - главного свойства других вирусов, состав-ляющих традиционную основу изучения их иммуногенности со времени открытия серологических реакций. В этом отношении существует только один зоопатогенный аналог - парвовирус алеутской болезни норок, но известна также низкая способность к нейтрализации типичных представителей иридовирусов. Было предпринято много попыток изучения этого уникального феномена, но удовлетворительного объяснения до сих пор не предложено, версий много - от отсутствия вирионных гликопротеинов до антигенной мимикрии и гетерогенности. В стремлении выяснить данный вопрос авторы поэтапно исследовали результаты взаимодействия вируса с AT, вируса с чувствительными клетками в культуре и комплекса вирус+АТ с чувствительными клетками. Показано, что иммунный комплекс (АГ+АТ) беспрепятственно проникает в чувствительные клетки, и вирус сохраняет исходную репродуктивную активность. При АЧС нейтрализация вируса in vitro сопровождается эффектом - усилением вирусного размножения и экстенсивной патологией за счет распространения инфицированных моноцитов-макрофагов.

У серопозитивных аборигенных животных в крови обнаруживаются специфические КСА и ПА в титрах до 1.128 и 1:64 соответственно. Специфические AT в крови поросят появляются только после приема молозива от серопозитивных свиноматок. Уровень AT в молозиве был равен или превышал концентрацию их в крови .

Экспериментальная инфекция. К экспериментальному заражению невосприимчивы кошки, собаки, мыши, крысы, кролики, куры, голуби, овцы, козы, КРС и лошади. У экспе-риментально зараженных аргасовых клещей Ornithodoros turicata вирус выявляли методом биопробы в течение года. В кишечнике клеща установлено наиболее раннее и длительное присутствие вируса. Быстрое распространение его и репликация в других тканях происходит посредством гемолимфы. Уже через 24 ч после заражениях помощью МФА выявляли АГ. Через 2-3 нед вирус обнаруживали в гемоцитах, а к 6-7-й нед - в большинстве тканей.

Культивирование. Для культивирования вируса АЧС могут быть использованы под-свинки 3-4-мес возраста, которых заражают любым способом. Чаще заражают внутримы-шечно в дозе 104-10б ГАД5о. При развитии клинических симптомов болезни на 4-6-е сутки после заражения животных убивают и в качестве вируссодержащего материала используют кровь и селезенку, в которых вирус накапливается в титре 106-8 ГАд50 Попытки культивировать вирус АЧС в организме других  животных успеха не имели.

К вирусу чувствительными оказались культуры лейкоцитов крови и макрофагов костного мозга свиней. Обычно заражают клетки на 3-4-й день роста в дозе 103 ГАД вируса на 1 мл питательной среды. Через 48-72 ч он накапливается в культурах клеток в титре 106 ГАД те/мл. Вирус АЧС инфицировал большинство макрофагов и только около 4% полиморфноядерных лейкоцитов периферической крови. В- и Т-лимфоциты, находящиеся в стадии покоя не обладают чувствительностью к вирусу. Последний реплицируется в макрофагах, и в наивысших титрах содержится в эритроцитах свиней. Он проникает в клетку главным образом рецепторнезависимым путем, репликация его происходит в цитоплазме, но для синтетических процессов необходимо участие ядра. Возможно заражение более чем одной частицей вируса, что предполагает наличие нескольких его субпопуляций в одной клетке и их взаимодействие. Число клеток, содержащих АГ на поверхности, спустя 13-14 ч достигает максимального уровня. Предполагается, что в их оболочках содержится ГАд АГ.

Вирус размножается в культурах лейкоцитов и костного мозга свиней с развитием ГАд и ЦПД без адаптации. При оптимальной дозе заражения ГАд проявляется через 18-24 ч, ЦПД - через 48-72 ч и характеризуется образованием цитоплазматических включений с последующим вытеканием цитоплазмы и появлением многоядерных гигантских клеток (клеток-теней) Он проникает в клетки адсорбционным эндоцитозом. "Раздевание" вирионов происходит в эндосомах, в других внутриклеточных везикулярных органеллах.

ГАд вируса в зараженных культурах настолько специфична, что используется в качестве основного теста в диагностике болезни. В других видах культур клеток вирус без предварительной адаптации не размножается. Он адаптирован к ряду гомо- и гетерологичных культур: перевиваемым линиям клеток почки поросенка (ПП и РК), почки зеленой мартышки (MS, CV), Vero-клеткам почки макаки и др. В литературе мало уделяется внимания влиянию углеводных компонентов, которые могут составлять от 50 до 90% массы гликопротеидов, на иммуногенность вируса: одной из причин слабой иммуногенности оболочечного гликопротеида (gp 120) вируса иммунодефицита (ВИЧ) является то, что 50% его массы обусловлено "атмосферой" сахаров, которая может играть негативную роль, препятствуя, например, доступу AT к сайту фиксации на оболочке ВИЧ, т.е жизненно важные участки ВИЧ "химически" защищены от действия иммунной системы. Не исключено, что причиной не нейтрализуемости вируса АЧС может быть наличие высокогликозилированных белков на поверхности вирионов. О сосуществовании гликозилированных компонентов неизвестной природы в оболочке вирионов АЧС сообщалось Мюдель Вал и др. в 1986 г. Наличие таких компонентов на мембранах клеток также может способствовать "ускользанию" от других эффекторных механизмов иммунной системы хозяев и повышать его патогенность.

ГА и ГАд свойства. ГА свойствами вирус не обладает. При размножении его in vitro в культурах лейкоцитов или клетках костного мозга свиней наблюдают явление адсорбции эритроцитов на поверхности пораженных клеток. Эритроциты прикрепляются к стенке лейкоцита, образуя вокруг него характерный венчик и иногда закрывая клетку со всех сторон, вследствие чего пораженные лейкоциты внешне напоминают тутовую ягоду. Время появления ГАд зависит от инокулируемой дозы вируса и может проявиться уже через 4 ч, но в большинстве случаев - через 18-48 ч, а при низких титрах вируса - через 72 ч. С увеличением времени инкубации число пораженных клеток возрастает, затем они начинают просветляться, и проявляется ЦПД вируса. Чувствительность РГАд зависит от свойств вируса и степени его накопления в инфицированной культуре клеток. Она выявляется под световым микроскопом при достижении титра инфекционности в культуре не ниже 104 ЛД5о/мл. По мнению отдельных авторов, время наступления ГАд зависит от титра вируса в исследуемой пробе материала. Снижение титра вируса АЧС влечет за собой снижение чувствительности РГАд. В связи с этим в ряде случаев возникает необходимость проведения до трех последовательных серийных "слепых" пассажей вируса в культуре лейкоцитов или костного мозга, чтобы подтвердить наличие его в исследуемом материале в случае ГАд варианта Иногда выделяются негемадсорбирующие штаммы вируса, обладающие только выраженными цитопатогенными свойствами. При пассировании их в культуре клеток не менее 50 раз и заражении свиней гемадсорбция не восстанавливалась. В ЮАР выделили негемадсорбирующий штамм от домашних свиней при естественной эпизоотии. Позднее там был выделен негемадсорбирующий вариант из суспензий клещей О tnoubata, собранных в очагах инфекции. Так как специфическая ГАд характеризует вирулентность штаммов АЧС, выделение менее вирулентных негемадсорбирующих вирусов от свиней с хронической пневмонией представляет большой интерес. Однако отдельные негемадсорбирующие изоляты или клоны могут быть высоковирулентными. Механизм реакции ГАд, а также локализация ответственных за ГАд АГ не установлены. Показана важная роль внешних мембран вирионов в связывании их с эритроцитами, так как вирионы, не имеющие оболочек, на эритроцитах не адсорбируются. Антигены, которые принимают участие в ГАд, локализованы в оболочках вирионов, происходящих из цитоплазматических мембран клеток хозяина

                      ЭПИЗООТОЛОГИЧЕСКИЕ ОСОБЕННОСТИ

Источники и пути передачи инфекции. Главный источник инфекции - больные и павшие свиньи. Переболевшие животные остаются длительное время носителями и выделителями вируса. Заражение происходит непосредственно при контакте больных свиней со здоровыми (через поврежденные слизистые оболочки, кожные покровы, алиментарно и, вероятно, через дыхательные пути) и опосредованно - через мясо, мясопродукты, внутренние органы, кровь, мочу, фекальные массы и т.д. от павших и убиваемых больных свиней; через предметы ухода, обслуживающим персоналом, домашними и дикими животными, птицами, кожными паразитами и насекомыми, которые были в контакте с больными и павшими свиньями. АЧС при первичном проявлении обычно протекает остро и подостро с гибелью до 97% свинопоголовья. В изолированных хозяйствах в тропических условиях причиной возникновения вторичных очагов являются переболевшие свиньи - скрытые носители возбудителя. Так, вирус АЧС в Народной Республике Конго циркулирует среди местных животных в виде трудно обнаруживаемой негемадсорбирующей популяции, не вызывая каких-либо видимых симптомов болезни и создавая положительный иммунный фон у местных свиней. Эпизоотологическое обследование местного свинопоголовья свидетельствует о том, что в определенных условиях аборигенные домашние свиньи, как резервуар вируса в природе, играют существенную роль в эпизоотологии АЧС У серопо штивных аборигенных животных в крови обнаруживаются специфические КСА и ПА в титрах до 1 128 и 1 64 соответственно С целью изучения формирования пассивного иммунитета проведены опыты с поросятами различного возраста, полученными от серопозитивных животных В крови не родившихся плодов, а также безмолозивньгх поросят, специфические AT отсутствовали Также не был выделен вирус от указанных животных Специфические AT в крови поросят появились только после приема молозива от серопозитивных свиноматок Прослежена динамика специфических AT в крови поросят от серопозитивных свиноматок в течение 5-мес периода При контрольном заражении 2-5 мес поросят, в крови которых обнаруживались КСА и ПА в титре 1 16-1 32 и 1 2-1 4 соответственно, все животные пали с клиническими признаками АЧС Находящиеся с ними в контакте серопозитивные поросята того же возраста оказались устойчивыми к заражению. Вирус АЧС может персистировать как в организме восприимчивых свиней, так и m vitro в культуре клеток. В условиях Африки домашние свиньи могут инфицироваться посредством контакта с дикими бородавочниками (Phaco choerus) и кустарниковыми свиньями (Patomochoerus), у которых он вызывает латентную инфекцию Аргасовые клещи О moubata porcinus - естественный резервуар и переносчик вируса АЧС Клещи орнитодорины (переносчики вируса АЧС) могут жить 9 лет, и вирус АЧС долго сохраняется в их популяции О tuncata обнаружены в Северной Америке в штатах Ута, Колорадо, Канзас, Оклахома, Техас, Нью-Мехико, Аризона, Калифорния и Флорида Клещи могут мигрировать на 8 км от места обитания Помимо О tuncata, вирус АЧС может переноситься еще тремя видами клещей О puertonceusis, О tolaje, О dugersi

Установлены устойчивость вируса в мертвых клещах, а также размножение и персисти-рование его у 70-75% клещей в течение 13-15 мес Членистоногие получают вирус при кро-вососании больных животных в период виремии Вирус размножается в членистоногих, у которых длительный период персистенции, и, наконец, клещи его передают здоровым свиньям в процессе кормления Вирус АЧС бьи выделен из коксальной жидкости, слюны, экскретов, мальпигиевых сосудов и экссудата половых органов у естественно и экспериментально инфицированных клещей, а также из яиц и нимф первой стадии инфицированных самок. Таким образом, у этого вида клещей возможна трансовариальная и трансспермаль-ная передача вируса Это способствует поддержанию и циркуляции вируса в популяции даже при отсутствии регулярных контактов переносчиков с инфицированными животными Достаточно агента однажды занести в популяцию клещей, и возникает его циркуляция независимо от контакта этой популяции с чувствительными животными в дальнейшем. В связи с большой продолжительностью жизни клещей (10-12 лет) очаг болезни в случае его возникновения может существовать неопределенно долгое время В местностях, где это произошло, возможность искоренения АЧС представляется сомнительной

Таким образом, основной путь быстрого распространения возбудителя и возникновения новых вспышек болезни, вероятно, алиментарный Респираторный путь способствует рас-пространению его в пределах эпизоотического очага, а трансмиссивный - созданию стойких природных очагов В связи с тесными биологическими взаимоотношениями вируса и арга-совых клещей природный очаг может существовать без повторных заносов вируса неопределенное время

Спектр патогенности в естественных условиях. В естественных условиях африканской чумой болеют домашние и дикие свиньи У некоторых диких африканских свиней болезнь протекает субклинически Такие животные представляют большую опасность для свиней культурных пород В природе существует замкнутый круг циркуляции этого вируса между дикими свиньями-вирусоносителями и клещами (род Ormthodonis) Вирус АЧС представляет гетерогенную популяцию, состоящую из клонов, обладающих разными биологическими характеристиками в отношении ГАд, вирулентности, инфекционности, размеров бляшек, АГ свойств Вирулентность изолята определяется вирулентностью доминирующего в популяции клона, а не количеством введенного вируса Пассирование изолятов вируса АЧС на свиньях и в культуре клеток Vero может привести к изменению соотношения разных клонов в вирусной популяции и изменению всех ее характеристик Культуральные и вирулентные свойства возбудителя АЧС подвергаются модификации в процессе естественного течения эпизоотии и при экспериментальной селекции Культуральные и вирулентные свойства вируса АЧС чрезвычайно лабильны он может утрачивать ГА способность, снижать вирулентность, вплоть до полной ее утраты, в процессе естественной эволюции эпизоотии, и в эксперименте при пассировании в тканевых культурах.

Клинические признаки и патологоанатомические изменения. Они сходны с таковыми при КЧС АЧС проявлялась в виде интенсивной геморрагической септицемии - в высшей степени контагиозной, быстро протекающей болезни, вызывающей гибель всех контаминированных животных. В естественных условиях инкубационный период длится 5-7 да, в эксперименте срок его варьировал в зависимости от штамма и дозы вируса Различают сверхострое, острое, подострое, хроническое и латентное течение болезни Чаще наблюдают сверхострое и острое течение. При сверхостром течении температура тела у больного животного повышается до 40,5-42°С, сильно выражены угнетение и одышка. Животное больше лежит, а через 24 -72 ч погибает. При остром (наиболее характерном) течении болезни температура повышается до 40,5-42°С и понижается за 1 дн до гибели животного. Одновременно с повышением температуры появляются первые симптомы болезни подавленное состояние, парез задних конечностей. Появляются красно-фиолетовые пятна на коже ушей, рыла, брюха, промежности и нижней части шеи. Параллельно проявляются признаки воспаления легких дыхание становится коротким, частым, прерывистым, иногда сопровождается кашлем. Симптомы расстройства пищеварения выражены слабо обычно наблюдается длительный запор, кал бывает твердым, покрыт слизью. В некоторых случаях наблюдается понос с кровью. В агональ-ной стадии болезни животные находятся в коматозном состоянии, которое продолжается 24-48 ч, температура тела снижается ниже нормы и через 4-10 дн с момента повышения температуры животное гибнет. Подострое течение по симптоматологии сходно с острым, но признаки болезни развиваются менее интенсивно. Болезнь длится 15-20 дн, свиньи обычно погибают. У единичных выживших особей развивается хроническое течение болезни, которое характеризуется перемежающейся лихорадкой, истощением, остановкой роста, мягкими безболезненными отеками в суставах запястья, плюсны, фаланг, подкожных тканей морды и нижней челюсти, некрозами кожи, кератитами. Животные болеют 2-15 мес, гибель,  наступает после вовлечения в инфекционный процесс легких. Клинически же большинство выздоровевших животных превращаются в здоровых носителей возбудителя, т е у них развивается латентное течение АЧС.  Патогенез хронического течения АЧС имеет некоторое сходство с такими болезнями как ИНАН, алеутская болезнь норок и др. Это сходство выражается в персистировании вируса, слабой, если не полностью отсутствующей, вируснейтрализующей активности сывороток, гипергаммаглобулинемией. Последняя, видимо, обусловлена постоянной антигенной стимуляцией персистирующим вирусом, поскольку он выделяется из органов большинства хронически инфицированных животных, и его титр коррелирует с повышением уровня гаммаглобулинов и AT

В последние 20 лет в Португалии, Испании, Анголе и других странах произошло изме-нение формы проявления АЧС - летальность значительно снизилась, возросло число случаев инаппарантной инфекции, латентного носительства. Латентное течение характерно для естественных носителей вируса - бородавочников, лесных и кустарниковых свиней в Африке и домашних в Испании и Португалии. Клинически эта форма не выражена и проявляется лишь перемежающейся виремией. При стрессах они выделяют вирус и заражают здоровых свиней. По крайней мере 3 вида диких свиней, обитающих в Африке, могут быть носителями вируса АЧС без видимых клинических признаков болезни. Однако, если этот вирус ввести домашним свиньям, он вызовет высококонтагиозную сверхострую лихорадочную болезнь с летальным исходом. Отдельные особи, выжившие при такой форме болезни, обычно устойчивы к массивной дозе высокопатогенного гомологичного штамма. Хотя в сыворотках таких свиней-реконвалесцентов можно выявить высокие титры специфических (КС, ПА) AT, их иммунологическое значение остается неясным. Такие животные почти всегда являются хронически инфицированными, носящими в крови одновременно AT и вирус.

У свиней, павших от острой или подострой формы болезни, упитанность сохраняется, трупное окоченение выражено, кожа подгрудка, вентральной части брюшных стенок, внутренней поверхности бедер, мошонки покрасневшая или багрово-фиолетового цвета. Носовая полость и трахея заполнены розоватой пенистой жидкостью Лимфоузлы туши и внутренних органов увеличены, поверхности разреза мраморные. Нередко они темно-красного, почти черного цвета и напоминают сгусток крови. Селезенка увеличена, вишневого или темно-красного цвета, мягкой консистенции, края её закруглены, пульпа сочная, легко соскабливается с поверхности разреза. Легкие полнокровны, увеличены в объеме, серовато-красного цвета Междольковая соединительная ткань сильно пропитана серозно-фибринозным экссудатом и выступает в виде широких тяжей, четко ограничивающих легочные дольки и доли Нередко обнаруживают мелкофокусные кровоизлияния под плеврой и очаги катаральной пневмонии. Почки часто увеличены, темно-красного цвета, с пятнисто-точечными кровоизлияниями. Почечная лоханка отечна, усеяна пятнистыми геморрагиями Иногда кровоизлияния находят на фоне анемии почек. Печень увеличена, полнокровна, неравномерно окрашена в серовато-глинистый цвет Слизистая оболочка желчного пузыря набухшая, пронизана точечными кровоизлияниями, последние локализуются и в серозной оболочке Слизистая ЖКТ покрасневшая, набухшая, местами (особенно по складкам) с кровоизлияниями В некоторых случаях геморрагии локализуются в серозной оболочке толстого кишечника. Сосуды головного мозга кровенаполнены, мозговое вещество отечно, с кровоизлияниями. При хроническом течении болезни патоморфологические изменения проявляются резким увеличением бронхиальных лимфоузлов и двусторонним поражением легких. Бессим-птомное течение характеризуется мраморной окраской портальных или бронхиальных лимфоузлов и очаговым поражением легких.

Гистологические изменения. При остром и подостром течении болезни резко рас-страивается гемодинамика в лимфоузлах и селезенке в результате мукоидного набухания и фибриноидного некроза стенок кровеносных сосудов; опустошения лимфоидной ткани и распад клеток по типу кариорексиса В ЦНС и в паренхиматозных органах отмечают воспалительно-дистрофические изменения различной степени выраженности. ИФ вирус и его АГ обнаруживают в макрофагах, ретикулярных клетках, лимфоцитах и в купферовских клетках, в мегакариоцитах и гемоцитобластах мазков-отпечатков селезенки, лимфоузлов, костного мозга, печени и легких больных животных Видны перинуклеарные включения

При хроническом течении патологический процесс локализуется преимущественно в бронхиальных лимфоузлах и легких. При этом регистрируют изменения, присущие серозно-геморрагическому лимфадениту и крупозно-некротической пневмонии. Возможен переход воспаления на сердечную сорочку и миокард. Бессимптомное течение болезни ограниченного характера проявляется неравномерной гиперемией бронхиальных или портальных лимфоузлов, очаговой серозно-катаральной или серозно-фибринозной пневмонией. В организме больных свиней вирус первоначально обусловливает гиперплазию лимфоидных клеток В процессе его репродукции и накопления основная масса их (70-80%) погибает по типу ка-риопикноза и кариорексиса В культуре клеток костного мозга и лейкоцитов крови свиньи происходит адсорбция эритроцитов на поверхности инфицированных клеток вирусом АЧС при достижении титра вируса 103 5-4 ° ГАЕ5о/мл В перинуклеарной зоне инфицированных клеток появляются включения, располагающиеся в местах синтеза вируса Позднее зараженные клетки округляются, теряют связь друг с другом и отслаиваются от стенки.

Патогенез. В естественных условиях вирус проникает в организм свиней через органы дыхания, пищеварения, поврежденную кожу и слизистые оболочки Нуклеиновая кислота вируса индуцирует перестройку клеточного метаболизма и активизирует гидролитические ферменты, в результате чего усиливается пролиферация клеток лимфоидной ткани Пролиферирующие клетка представляют собой благоприятную среду для репродукции вируса В организме вирус быстро распространяется по кровеносным и лимфатическим сосудам, оказывает воздействие на лимфоидную ткань, костный мозг и на стенки кровеносных сосудов. Действие его усугубляется развитием аллергических реакций, проявляющихся увеличением количества тучных клеток, эозинофилов, а также развитием мукоидного набухания и фиб-риноидного некроза сосудистых стенок. Вирус АЧС размножается в клетках лимфоидной и ретикулоэндотелиальной тканей При остром течении болезни он угнетает иммунную систему, разрушая или изменяя функции лимфоидных клеток, при хроническом или латентном - нарушает соотношение субпопуляций лейкоцитов, функцию макрофагов, синтез и активность медиаторов клеточного иммунитета. Патологические процессы, развивающиеся в поздней стадии острого течения АЧС (резкое ухудшение общего состояния, увеличение проницаемости сосудов, множественные геморрагии), а также при длительном течении болезни (крупозно некротическая пневмония, инфильтрация тканей лимфоидными клетками, некрозы кожи, артриты, гипергаммаглобулинемия) вызваны гиперэргическим, аллергическим и аутоиммунным процессами. В патогенезе АЧС аллергические и аутоаллергические процессы играют существенную роль При остром течении болезни резко изменяются свойства крови (лейкопения, повышение склеивание лейкоцитов, активация ферментов в крови и органах), тяжелые дегенеративные изменения клеток РЭС, множественные крово-излияния в результате нарушения проницаемости стенок сосудов, активации фосфотаз и исчезновение гликогена в печени. При хроническом течении АЧС выявляют системное проявление аллергической реакции, переходящей в аутоиммунную болезнь с поражением органов-мишеней. В очагах поражения установлено отложение комплексов антиген-антитело с фиксацией комплемента. В период рецидивов болезни выявляют циклические изменения в картине белой крови, аутоиммунное повреждение нейтрофилов и угнетение фагоцитарной активности. При подостром и хроническом течениях АЧС на месте повторного введения вируса часто развиваются обширные местные воспалительные процессы, названные опухолеподобными образованиями. Они представляют собой обширные припухлости в области подчелюстного пространства и шеи в диаметре до 30-40 см При этом болезненность и повышение местной температуры не выражены. Однако в течение 12-14 сут эти образования увеличиваются, что сопровождается повышением температуры и ухудшением общего состояния животных. При убое и вскрытии таких свиней устанавливают нечетко ограниченные от нормальных тканей образования с выраженным отеком по периферии и некрозом в центральной части. В тканях установлено накопление вируса в негемадсорбирующей форме до 107  ТЦД5о/мл и специфического АГ, выявленного в РСК и ИФ. При гистоисследовании установлены изменения, характерные для гиперэргического воспаления инфильтрация тканей лимфоидно-гистиоцитарными элементами с примесью эозинофилов, нейтрофилов и плазмоцитов.

Воспалительно-аллергические реакции на месте повторного введения вируса или его АГ способствуют локализации патологического процесса. Аллергическую сенсибилизацию при АЧС удается выявить методом внутрикожной аллергической пробы. Аллергеном служат концентрированные вируссодержащие материалы, инактивированные у-лучами, которые вводят внутрикожно. На месте введения аллергена у инфицированных вирусом АЧС животных через 24-48 ч развивается воспалительная реакция, сопровождающаяся инфильтрацией соединительнотканного слоя кожи мононуклеарными клетками, что проявляется гиперемией и припухлостью от 10 до 40 мм в диаметре Аллергическую реакцию выявляют с 3 по 150-е сут после инфицирования у 68,7% животных. Приведенные сведения позволяют считать, что аллергические или аутоаллергические реакции играют существенную роль в патогенезе и иммуногенезе АЧС.

ДИАГНОСТИКА

Предположительный диагноз на АЧС может быть поставлен на основании анализа клинико-эпизоотологических данных и патологоанатомических исследований Основанием для подозрения АЧС может служить возникновение заболеваний с быстрым течением и высокой смертностью среди свинопоголовья, привитого против классической чумы свиней Сходство клинических и патологоанатомических признаков классической и африканской чумы свиней затрудняет постановку диагноза

В отличии от возбудителя классической чумы вирус АЧС имеет многообразие в анти-генном и иммунологическом отношениях, ГАд и негемадсорбирующие штаммы, что значительно усложняет постановку диагноза Возбудители АЧС и КЧС вариабельны и по вирулентности в природе выделены штаммы вируса, вызывающие различные формы и течения болезни - сверхострое, острое, подострое, хроническое бессимптомное с летальностью от IО до 100%, встречаются и природноослабленные, авирулентные штаммы Поэтому дифференцировать АЧС на основании клинико-эпизоотологических данных и патоморфологических изменений чрезвычайно трудно, необходимо прибегать к лабораторному анализу.

Методы лабораторной диагностики Их можно разделить на 2 группы, первая включает методы выделения вируса и выявления АГ, вторая - методы выявления AT.

Экспресс-метод обнаружения вируса. Во Франции разработан метод определения вируса АЧС в культурах клеток и полевых пробах с помощью ДНК-зонда, меченного биотином Данный метод позволяет обнаружить негемадсорбирующие штаммы вируса АЧС, не-большие количества его в материалах и убитые или поврежденные вирионы Полученный зонд в 10 раз чувствительнее 32Р-меченого зонда. В процессе усовершенствования метода гибридизационного зонда, предложен не менее быстрый и биологически безопасный метод диагностики АЧС с помощью ПЦР с фрагментом длиной 740 тыс п о , полученным из консервативной части генома вируса Идентификация амплифицированного фрагмента проводится с помощью гнездных праймеров или при использовании биотинилированных олигонуклеотидных зондов Метод превосходит выделение вируса и Гад. В нашей стране применена ПЦР для обнаружения последовательностей ДНК, специфичных для вируса АЧС Показана возможность амплификации индивидуальных фрагментов ДНК вируса АЧС различных серотипов, а также повышение чувствительности индикации с использованием  ПЦР и гибридизацией продуктов ПЦР с нерадиоактивным ДНК-зондом.

Индикация и идентификация вируса. При первичном возникновении АЧС лабора-торная диагностика основана на выделении вируса в культуре клеток костного мозга или лейкоцитов крови свиней, его идентификации в реакции ГАд или прямой ИФ и определения типовой принадлежности вируса в РЗГАд Для выявления вируса АЧС непосредственно в жидкой пробе предложено использовать сенсибилизированные эритроциты, иммуносорбент сефарозу и суспензию клеток костного мозга для специфического концентрирования АГ вируса АЧС из объектов ветнадзора с последующим его определением 125g AT

Выделение и индикация вируса в культурах клеток. Наиболее достоверным и на-дежным лабораторным методом диагностики АЧС - выделение вируса в клеточных культурах и идентификации его в РГАд Биопроба длительна по времени и проводится в учреждениях, где имеются для этого ветеринарно-санитарные условия для работы с особо опасными экзотическими болезнями. Наиболее достоверный и надежный лабораторный метод - РГАд Она состоит в том, что зараженные вирусом АЧС мононуклеарные фагоциты в ККМС (культура клеток мозга свиней) или КЛС (культура лейкоцитов свиней) приобретают способность адсорбировать на себя эритроциты крови свиньи, образуя при этом скопления в виде ягоды малины Для получения ККМС и КЛС используют клинически здоровых подсвинков 2-4-мес возраста массой 25-30 кг из хозяйств, благополучных по инфекционным болезням. Лейкоциты получают из гепаринизированной крови подсвинков. О размножении вируса судят по РГАд Для заражения используют 2-3-сут культуру лейкоцитов или клеток костного мозга свиней Вирус АЧС характеризуется рядом уникальных особенностей Во-первых, популяция его гетерогенна, во-вторых, некоторые штаммы вируса способны вызывать атипичную "рыхлую" ГАд, в отличие от типичной "многослойной" Гад. Некоторые варианты АЧС не обладают ГАд свойствами, а вызывают только ЦПД, проявляемое лизисом зараженных клеток При выделении негемадсорбирующих изолятов  идентификацию проводят в ИФ или ставят биопробы.

Тест ауто-ГАд. Метод постановки ауто-ГАд основывается на выявлении ГАд клеток, образовавшихся в крови больного животного. Данный способ по чувствительности сравним с описанной выше РГАд в ККМС или КЛС Однако его применение позволяет получить предварительный результат в течение 1-3 ч после отбора пробы крови без убоя животного Реакция считается положительной, если в культуре клеток, зараженной одним из материалов, обнаружена четкая ГАд, при отсутствии ее в контроле Результат - от-рицательный при отсутствии ГАд и ЦПД в культурах клеток в течение 3-х пассажей

РЗГАд. Предназначена для определения типовой принадлежности ГАд штаммов вируса АЧС и основана на способности специфических сывороток одерживать ГАд в культурах клеток КМС и ЛС, зараженных гомологичным типом вируса АЧС РЗГАд ставят со стан-дартными специфическими сыворотками серотипов 1, 2, 3 и 4, полученными, на соответствующие эталонные штаммы вируса АЧС ("Лиссабон-57" -1-й тип, "Конго-73" - 2-ой тип, "Мозамбик-78" - 3-й тип, "Португалия-60" - 4-й тип). Материал эталонных штаммов и ти-пируемых изолятов используют с активностью 104-106 ГАЕ5о/мл, а типоспецифические сыворотки - не менее 1 50. Зараженные и контрольные культуры клеток инкубируют при 37-38°С Учет реакции ежедневный в течение 2 сут при отсутствии неспецифической дегенерации в контроле культур клеток и сывороток, наличии ГАд в контроле,

РДП. Успешно применяется для обнаружения специфического АГ в органах павших свиней (печень, селезенка), а также для выявления специфических ПА в сыворотках и тка-нях хронически больных животных. РДП - относительно низкочувствительная Она прояв-ляется с тканями, полученными через 24 ч и после подъема температуры, перед появлением других симптомов болезни Поскольку специфичность РДП была доказана и при европейской чуме свиней, ее предложили для дифференциации двух видов чумы свиней. Для этого используют сыворотку свиней, иммунизированных аттенуированным вариантом вируса, которая дает преципитацию с материалами от свиней и с детритом инфицированных клеток. По отдельным отзывам, РДП при АЧС специфична и удобна в полевых условиях при остром течении болезни В Испании сравнивали РДП с другими методами Установили, что РДП удобна, но ее чувствительность ниже, чем других Поэтому реакцию рекомендуют для предварительной диагностики Чувствительность РДП при выявлении вирусного АГ 50%. Реакцию считают положительной, если между лунками со специфическим и испытуемым компонентами (АГ и сыворотками) через 12-24 ч появляются одна или две линии преципитации Они должны быть тонкими и иметь четкие границы. При отсутствии их - реакцию считают отрицательной

ИФ. Применяют для выявления специфического АГ АЧС в мазках-отпечатках, приго-товленных из проб органов больных или павших свиней, а также в культуре клеток, инфицированных вируссодержащим материалом.

Испытуемые материалы пробы органов и тканей от больных и павших свиней, культура ЛС или КМС, инфицированная испытуемым материалом, флюоресцирующие Ig спе-цифические по ТУ 4620-81 Контрольные материалы пробы органов и тканей интактных свиней, интактная культура ЛС или КМС При сомнительных результатах дальнейшие ис-следования с помощью ИФ проводят в культуре ЛС и КМС, инокулированной подозреваемым в заражении вирусом АЧС материалом, через 24-72 ч после его внесения

Модифицированный прямой метод РСК чувствителен при обнаружении антигена вируса АЧС в испытуемых тканях, взятых от свиней в период острой болезни (через день после повышения температуры) При помощи модифицированной РСК устанавливают лишь сывороточные AT (в случаях серологической оценки постинфекционного и поствакцинального иммунитетов) КС АГ получают методом экстракции ткани смесью ацетона и эфира

Биопроба. Ставят с разрешения Департамента ветеринарии При первичном подозрении на АЧС ее постановка обязательна Биопробу ставят по одному из двух вариантов

Первым еариант Четырех из восьми подсвинков 2-4-мес возраста, иммунных к класси-ческой чуме, заражают внутримышечно вирусом КЧС, а 4-х - испытуемым материалом (кровь, суспензия органов) У всех подопытных животных ежедневно измеряют температуру Если зараженные животные заболеют и погибнут (обычно в течение 10 дн), а все инфицированные вирусом КЧС останутся здоровыми, в испытуемом материале содержится вирус АЧС Специфичность гибели зараженных животных должна быть подтверждена характерными для АЧС клиническими симптомами и патологоанатомическими изменениями, а также выделением от павших животных вируса и его идентификацией Если после заражения останутся здоровыми все 8 подсвинков испытуемый материал содержит вирус КЧС. Второй вариант Восемь подсвинков 2-4-мес возраста массой от 25 до 40 кг (4 из них должны быть иммунны к КЧС, а 4 - не иммунны) заражают внутримышечно суспензией из испытуемого материала (или кровью) Если иммунизированные против КЧС животные останутся здоровыми, а не иммунизированные погибнут, значит, в испытуемом материале был вирус КЧС Если же погибнут все 8 подсвинков - в испытуемом материале был вирус АЧС В последнем случае специфичность гибели подсвинков от АЧС должна быть подтверждена, как указано выше В случае опасности появления АЧС на территории страны диагноз на КЧС и АЧС ставят одновременно Поэтому второй вариант иммунологической пробы предпочтительнее, так как позволяет диагностировать обе болезни одновременно Биопроба методологически не сложна, но в санитарном отношении должна быть проведена с соблюдением мер, абсолютно исключающих вынос инфекции

Серодиагностика и ретроспективная диагностика. Определение AT к вирусу АЧС имеет большое эпизоотологическое значение ввиду длительной персистенции вируса в организме свиней без проявления клинических признаков болезни Такие животные - вирусоносители могут явиться источником инфекции. По индикации AT можно судить о количестве хронических и субклинических случаев болезни.

НИФ. Она может с успехом применяться в лабораторной диагностике для определения специфических AT к вирусу АЧС. Данный метод оказался ценным при установлении эпизоотической ситуации. С его помощью установлены AT у больных свиней-хроников в 100% и у свиней-вирусоносителей в 74,5% случаев. В качестве АГ для непрямого метода ИФ используют 4-5-дн КЛС, зараженные вирусом АЧС. Через 24-48 ч после заражения культуры фиксируют в ацетоне, после чего наслаивают на 60 мин исследуемые сыворотки и еще на 30 мин антисвиную коньюгированную сыворотку. При положительной реакции в цитоплазме наблюдают ярко-зеленое свечение вирусных включений. Для контроля используют зараженные клеточные культуры, обработанные сывороткой здоровых свиней.

В 1976 г. был разработан новый метод, основанный на выявлении специфических AT в экстрактах тканей погибших животных. Эти AT в НИФ были идентифицированы как IgG. AT служила культура клеток, выращенная на покровных стеклах и зараженная адаптированным вирусом. Анти-АЧС-IgG обнаруживали в различных тканях (легких, селезенке, лимфоузлах, печени, почках, поджелудочной железе, мозге и коже) через 12-14 дн после инокуляции. Лучшие результаты получали с пробами селезенки и легких: в зависимости от клинической стадии титры AT колебались в пределах от 1.5 до 1.5000. Исследование тканевых AT погибших свиней - более чувствительный метод, чем обнаружение вирусного АГ. Метод прост, исследование выполняется за 2-3 ч. По данным испанских ученых у свиней, при хроническом течении болезни AT выявляют в 100%, у свиней-вирусоносителей - в 74,5% случаев. Положительный результат указывает на АЧС, и дальнейших исследований не проводят Метод непрямой ИФ используют при хроническом и латентном течении АЧС для выявления AT в  сыворотках крови, суспензий из органов

Испытуемые материалы, суспензии из проб органов (20%) от павших, вынужденно убитых или подозреваемых в заражении АЧС и вакцинированных животных; сыворотки крови хронически больных, переболевших и вакцинированных животных.

ИФА. ИФА (ELISA) используют для обнаружения специфических AT в сыворотках крови больных АЧС. Набор препаратов для непрямого метода ИФА включает, антивидовой (антисвиной) пероксидазный конъюгат (антисвиные Ig сыворотки осла, меченые пероксидазой); специфическая сыворотка свиньи, содержащая AT к вирусу АЧС, контрольная (нормальная) сыворотка свиньи; специфический культуральный АГ для серо-логической диагностики АЧС; контрольный АГ из незараженной культуры клеток. Поли-стироловые пластины для ИФА сенсибилизируют специфическим и нормальным АГ, взя-тыми в рабочих разведениях, в течение ночи при комнатной температуре во влажной камере в 0,5 М карбонатно-бикарбонатном буферном р-ре. Учет результатов проводят через 20 мин после проявления окраски на сканирующем спектрофотометре при длине волн 492 нм или визуально. Для визуального учета необходимо остановить реакцию, внося в лунки по 25 мкл 2,5 М H2SO4 Реакцию учитывают по разности поглощения сыворотки в испытуемых разведениях против специфического и контрольного АГ Результат считают положительным, если разница поглощения при разведении сыворотки 1:125 превышает 0,1

Метод ингибирования твердофазного ИФА. Предназначен для выявления специфических к вирусу АЧС антител в сыворотке крови или суспензиях проб органов животных с низким их уровнем (1:5-1.25) в ранние сроки после вакцинации или заражения (3-5 сут). Преимущество его заключается в том, что он позволяет выявлять AT в цельной пробе и проще в техническом исполнении, не уступая по чувствительности непрямому методу

Инструментальный учет проводят после внесения субстрата и инкубирования пластин в темноте при комнатной температуре аналогично непрямому ИФА Если интенсивность (оптическая плотность) окрашивания в лунках с испытуемыми пробами снижается на 50% и более по отношению к оптической плотности содержимого лунок с нормальной сывороткой, т е оптическая плотность содержимого лунок с исследуемой сывороткой в 2 раза и более ниже, то данная сыворотка считается положительной

ВИЭОФ. Используют для выявления специфических AT в сыворотках крови больных свиней при хроническом и латентном течении АЧС. В РФ предложен порядок и схема лабораторных исследований при первичном диагностировании АЧС. Патматериал из первичного эпизоотического очага направляют во ВНИИВВиМ Предварительно диагноз ставят на основании экспресс-анализа поступившего материала при выявлении специфического АГ и AT в прямой ИФ и непрямой ИФ с ответом через 3 ч с момента получения проб Диагноз подтверждают выделением возбудителя в КЛС или КМС и биопробой на подсвинках Затем вирус идентифицируют и типируют в РГА, ИФ и РЗГА, при положительных результатах ставят окончательный диагноз АЧС исключают на основании отрицательных данных выявления АГ и AT в ИФ, твердофазного ИФА и ВИЭОФ, выделения и идентификации вируса в культуре клеток в течение трех последовательных пассажей (15 сут) проб патматериала и сыворотки крови животных, подозреваемых в заражении. Патологический материал из вторичных эпизоотических очагов АЧС исследуют в зональных специализированных лабораториях по особо опасным заразным болезням животных и во ВНИИВВиМ Зональные специализированные лаборатории при наличии специфических АГ или AT в исходных пробах через 2-3 ч ставят предварительный диагноз на АЧС и направляют материал во ВНИИВВиМ Ретроспективную диагностику проводят выявлением антител в сыворотке крови свиней ВИЭОФ и твердофазным ИФА Отсутствие их дает основание дать отрицательный результат на АЧС Положительные данные ВИЭОФ или твердофазного ИФА подтверждает непрямой ИФ, после чего ставится диагноз на АЧС Во ВНИИВВиМ на основании выделения, идентификации и типирования возбудителя в культурах КЛС или ККМС в РГА, ИФ и РЗХГА через 1-15 сут устанавливают окончательный диагноз на АЧС, вызванную ГАд штаммами Низковирулентный негемадсорбирующий вирус АЧС (летальность 30-50%) выявляют обнаружением специфических AT в ИФ, выделением возбудителя в течение 1-3 пассажей (5-15 сут) в клетках КЛС и КМС и идентификацией АГ в ИФ При необходимости проводят биопробу Отрицательное заключение на АЧС во вторичных эпизоотических очагах дают по тем же критериям, что и в первичном

Современная дифференциальная диагностика АЧС и КЧС обеспечивает проведение со-ответствующих противоэпизоотических мероприятий по локализации, ликвидации и предупреждению распространения в наиболее сжатые сроки Разработка наборов препаратов для выявления АЧС и КЧС, оценка их эффективности на большом полевом материале позволили предложить схему лабораторной дифференциальной диагностики этих болезней ИФ мазков-отпечатков, несмотря на низкую чувствительность широко применяют в зональных специализированных лабораториях при предварительной оценке материала для последующего направления в региональный центр Исследуемым материалом для выделения вирусов АЧС и КЧС сразу же инокулируют культуры ККМС (КЛС) и РК-15 В течение 1-5 сут инку-бирования культуры клеток 1-го пассажа контролируют РГА и ИФ на наличие вируса АЧС, исключая возможную неспецифическую ГАд или наличие негемадсорбирующего вируса Для обнаружения вируса КЧС в культуре клеток РК-15 ИФ проводят ежедневно в течение 4 сут При отрицательных результатах делают 3 пассажа с обязательной ИФ

В случае выделения вируса АЧС его типируют в РЗГА Одновременно пробы исследуют на наличие специфических AT в сыворотке и органах (20%-ная суспензия) унифицированной ИФ на оба вируса, методом ингибирования твердофазного ИФА возбудителя АЧС и РН флюоресцирующих микробляшек (РНФБ) вируса КЧС Положительные результаты ИФ и РНФБ на КЧС оценивают в зависимости от сроков проведения вакцинации, а на АЧС - дают основание поставить окончательный диагноз

                    ИММУНИТЕТ И СПЕЦИФИЧЕСКАЯ ПРОФИЛАКТИКА

В патогенезе и иммуногенезе АЧС аллергические или аутоаллергические реакции играют существенную роль. При действии аттенуированных штаммов вируса на лимфоид-ные клетки происходит синтез неполноценных AT, неспособных нейтрализовать вирус Об-разуются комплексы антиген-антитело, которые концентрируются в тканях органов-мишеней, приводя к нарушению их функций и развитию аллергических и аутоиммунных процессов, наблюдают стимуляцию клеточного иммунитета - лизис инфицированных клеток сенсибилизированными лимфоцитами, выделение медиаторов клеточного иммунитета лимфотоксина, фактора угнетения миграции бласпрансформации и др Развитие этих процессов зависит от биологических свойств используемых штаммов и индивидуальных особенностей организма (состояние иммунной системы)

Определенную роль в патогенезе болезни играют взаимодействие вируса с эритроцитами и нарушение механизма свертывания крови. Влияние вируса на клетки лимфоидной системы и эритроциты характеризуется их разрушением или изменением функции, а также развитием аллергического и аутоиммунного процессов

Переболевшие или привитые (инактивированным материалом или аттенуированным вирусом) животные имеют определенную степень устойчивости к гомологичному изоляту вируса (задержка гибели свиней), изменение выраженности клинических признаков болезни, выздоровление и полное отсутствие реакции на контрольное заражение) Отсутствие специфической защиты против изолятов, выделенных в других зонах, свидетельствует об их АГ и иммунологических различиях .

С Anderson наблюдал длительное носительство вируса и его приживление при повторном заражении у переболевших и привитых животных Пассивный и колостральный иммунитет выражен слабо AT недостаточно нейтрализуют вирус. Причины слабой на-пряженности иммунитета, а также нейтрализующей активности AT связывают с особенностями АГ структуры вируса (блокирование АГ липидами, конкуренция или маскировка про-тективных АГ видовыми АГ вируса или хозяина), а также с изменением функции лимфоид-ных клеток - нарушение взаимодействия вируса и АГ с макрофагами и кооперации последних с Т- и В-лифоцитами (28, 29) В пользу первого предположения свидетельствует слабый или измененный ответ на инактивированные АГ препараты как у чувствительных, так и у других видов животных В условиях низкой активности AT усиливаются реакции клеточного иммунитета, которые имеют существенное значение в блокировании инфекции, а также являются причиной развития гиперчувствительности замедленного типа, аллергических и аутоиммунных осложнений.

Процесс защиты при АЧС представляется в виде динамического равновесия между этиологическими факторами (вирусом) и механизмами иммунной защиты Он может быть преобладающим как в том, так и в другом направлении, это зависит от свойств применяе-мых шт и состояния иммунной системы животного Надежных профилактических препаратов против АЧС - нет Получить инактивированные вакцины против АЧС классическими методами, используя современные методики, никому не удалось Большинство привитых животных при контрольном заражении погибали и только незначительная часть их выживала после длительного переболевания Результаты испытания инактивированной вакцины наводят на мысль, что основное значение в аномалии иммунитета при АЧС имеет структура АГ и их взаимодействие между собой, а не состояние иммунной системы макроорганизма. Препараты из живого аттенуированного вируса были более эффективными, вызывая слабую поствакцинальную реакцию, они защищали от заражения гомологичным вирусом 50-90% вакцинированных животных Однако, самые существенные недостатки живых вакцин - длительное вирусоносительство после прививки, развитие осложнений у части иммунных животных, приживление у вакцинированных животных вирулентного вируса без проявления клинических признаков болезни, что также опасно в практических условиях Учитывая эти недостатки поставлен под сомнение вопрос о применении живых аттенуирован-ных вакцин для ликвидации очагов болезни в сочетании с другими ветеринарно-санитарными мероприятиями Множественность иммунологических типов возбудителя и существование смешанных или измененных популяций вируса значительно ограничивают возможности использования таких препаратов Однако имеются сведения о подборе эффективных средств для лечения больных свиней и снятия вирусоносительства, которые можно применять в сочетании с аттенуированными штаммами вируса. В материалах совещания экспертов по АЧС Европейского экономического сообщества (1978-1987) и других сообщениях намечено развитие научных исследований, направленных на создание компонентных, химических и генно-инженерных вакцин С этой целью изучают тонкую АГ структуру возбудителя АЧС и инфицированных клеток, структуру и функции генетического материала проводят поиск протективных АГ с использованием современных методов молекулярной биологии генетики, монАТ Эти направления могут привести к выработке новых подходов к созданию эффективных и безвредных вакцин против АЧС

Ветеринарно – санитарная оценка продукции. На убой не допускают. В случае убоя  всё уничтожают сжиганием.

ЛЕКЦИОННЫЙ КУРС  ПО ЧАСТНОЙ ВИРУСОЛОГИИ "ВИРУСЫ ВЫЗЫВАЮЩИЕ БОЛЕЗНИ СВИНЕЙ" ДЛЯ СТУДЕНТОВ ФАКУЛЬТЕТА ВЕТЕРИНАРНОЙ МЕДИЦИНЫ Подготовлен профессором кафедры микробиологии, вирусологии, эпизоотологии и ветеринарно –санитарной экспертизы УГСХА ВАСИЛЬЕВЫМ Д.А.