Скубко О.Р.

Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования «Омский государственный аграрный университет имени П.А.Столыпина»,

Аннотация. Яичниковые и краниальные маточные нервы у собак располагаются в виде густо петлисто го сплетения в мезоварии на уровне его перехода на яичниковую сумку. Здесь отсутствуют сложные замкнутые фасциальные чехлы жировых отложений, прослойка соединительной ткани вокруг нервных волокон рыхлая и существенно тоньше, чем на периферии яичниковой сумки. Установленные морфологические особенности яичникового и краниального маточного сплетений, а также окружающих их структур предопределяют легкость инъекции и свободную диффузию введенных растворов вдоль поддерживающей связки яичника на значительные площади. Интрамезовариальная блокада яичниковых и краниальных маточных нервов у собак проводится внутриоперационно. Это позволяет безопасно и небольшой дозой анестетика провести обезболивание или патогенетическое лечение яичниковой сумки, мезометрия, яичника и краниальной части рогов матки. Техника инъекционного доступа для ее проведения, следующая: через разрез брюшной стенки яичниковая и маточная брыжейки выводятся в просвет операционной раны оперативного доступа. Затем вводят инъекционную иглу в толщу мезовария в непосредственной близости от яичниковой сумки и рога матки на глубину 3-4 сантиметра. Инъецируют 1% раствор новокаина или лидо-каина для обезболивания, либо 0,5% раствор новокаина с патогенетической целью. Доза в обоих случаях составляет от Змл. у мелких пород собак и до15 мл. раствора анестетика для крупных и гигантских пород с одной стороны тела. Патогенетический эффект выражался в нормализации основных клинических параметров у животных экспериментальной группы в течение первых 24 часов после операции. В течение всего последующего времени наблюдений (14 дней) эти показатели также оставались в пределах физиологической нормы.

Введение

Новокаиновые блокады симпатических и парасимпатических нервов остаются одним из наиболее эффективных, действенных, легко выполнимых и относительно без-опасных средств патогенетической терапии и, одновременно, местного обезболивания внутренних органов. У крупных копытных животных отмечено широкое использование блокад центров автономной нервной системы при острых незаразных заболеваниях, в том числе и хирургических [4, 5, 10]. Однако в лечебной работе клиник мелких животных наблюдается ограниченное применение подобных средств воздействия. Для всего многообразия современных пород собак и кошек до сих пор применяются способы транссоматических блокад автономных нервов области живота по И.Я. Тихонину и по В.В. Мосину [2, 6, 7, 9], разработанные главным образом для крупных животных и действующие на отдаленные от внутренних половых органов источники иннервации, что снижает их эффективность. Парасакральная блокада по И.А. Калашнику и пресакральная по П.Р. Пульняшенко [4, 7] показана для про-ведения обезболивания и патогенетического лечения области промежности, ануса, прямой кишки, мочевого пузыря, шейки, тела матки и наружных половых органов. Внутриоперационно, до предлагаемого способа интрамезовариальной блокады, применялся лишь способ плоскостного струйного орошения мезентерия, мезометрия, мезовария, большого и малого сальника, а также органов брюшной полости у собак растворами новокаина и совкаина, реализующийся после лапаротомии [4, 8]. Однако он небезопасен из-за риска отравления большим количеством анестетиков в зоне интенсивной тканевой и сосудистой резорбции и малоэффективен в силу слабой акцентированности воздействия в отношении конкретных органов и тканей брюшной полости.

Цель работы - предложить внутриопераци-онную методику блокад нервов яичников и матки у собаки домашней. Задачи исследования:

- уточнить органо - и гистотопические особенности нервов яичников и матки у со-баки домашней;

- разработать технику внутриоперационного оперативного доступа для проведения блокад нервов яичников и матки у собаки домашней;

- оценить влияние внутриоперационной блокады нервов яичников и матки, проведенной путем интромезовариального введения анестетика на изменения некоторых вегетативных функций и гемотологических показателей у собаки домашней.

Материал и методы

Работа проводилась на кафедрах анато-мии, хирургии и акушерства ИВМ и Б Ом-ского ГАУ в период с 2001 по 2015 гг.

Объектами морфологических исследова-ний служили трупы беспородных собак ме-зоморфного типа, подвергшихся эвтаназии в половозрелом возрасте по клиническим показаниям не связанным с заболеваниями мочеполовых органов. Методом обычного и тонкого препарирования по академику В.П. Воробьеву было изготовлено и изучено по 10 двусторонних препаратов, на которых была разработана техника посмертного введения красящего вещества (окрашенного черной тушью водного раствора латекса) в зону локализации яичниковых и краниальных маточных нервов. Для микротопографи-ческих исследований применялась окраска гистологических срезов гематоксилин-эозином, по Маллори, Вейгерту, Ван-Гизону, Нис-лю, Билыповскому-Гросс [1]. Всего было изготовлено 1200 гистопрепаратов.

Материалом для клинико-физиологических исследований послужили 40 клинически здоровых беспородных собак в возрасте 3-6 лет, подвергнутых овариогистерэктомии. Животные были разделены на экспериментальную и контрольную группы по 20 в каждой. Операция проводилась по единой методике с оперативным доступом по белой линии живота. За 2-3 минуты до реализации оперативного приема, животным экспериментальной группы была проведена интрамезовариальная внутриоперационная бло-када яичниковых и краниальных маточных нервов. Клинические наблюдения, общие и биохимические показатели крови исследовали до и в последующие 14 суток после операции. Кровь для биохимического анализа брали из вены сафена, для общего анализа из ушной вены за 3-4 часа до кормления. Уровень гемоглобина, СОЭ, количество эритроцитов, лейкоцитов в крови, лейкоформулу определяли общепринятыми методами [3] и с использованием гемоанализатора Vetscan НМ2. Биохимические показатели крови ис-следовали с использованием биохимическо-го анализатора ScreenMasterTouch.

Результаты исследований

Анатомо-топографически яичниковые и краниальные маточные нервы располагаются в непосредственной близости друг от друга в виде густопетлистого сплетения в мезоварии на уровне его перехода на яичниковую сумку и поддерживающую связку яичника. Здесь отсутствуют сложные замкнутые фасциальные чехлы жировых отложений, а рыхлая волокнистая соединительная ткань всегда развита и легкодоступна даже после неширокой лапаротомии в проекции яичников. Коллаге-новые и эластиновые волокна переплетаются с элементами нервной ткани в окружении основного вещества и большого количества жировых включений. В исследуемой зоне нет других, кроме рыхло распределенных волокон, структур. Необходимо отметить, что прослойка соединительной ткани вокруг околоорганных нервных волокон рыхлая и существенно тоньше, чем на периферии яичниковой сумки. Последнее свидетельствует о практически полном отсутствии препятствия для проникновения лекарственных растворов к околояичниковым нервным волокнам. Присутствие в составе основного вещества мезовария большого количества эластических волокон позволяет этой ткани восстанавливать пространственную организацию после растяжения. Установленные анатомо- и гистотопографические особенности околояичникового и краниального маточного сплетений, а также окружающих их структур предопределяют легкость инъекции исвободную диффузию введенных растворов вдоль поддерживающей связки яичника на значительные площади.

В результате проведенных исследований было установлено, что охват окрашенным раствором латекса всех нервных элементов мезовария, поддерживающей связки яичника и краниальной части мезометрия обуславливает максимальную эффективность методики при ее использовании с целью обезболивания яичников и рога матки, и для патогенетического воздействия на эти органы. Интрамезовариальная блокада яичниковых и краниальных маточных нервов осуществляется внутриоперационно после проведения лапаротомии в медианной, парамедианной областях, а также горизонтальных разрезов в области собственно и мягкого подвздохов, проводимых при лечебно-диагностических операциях на внутренних половых органах собак. Блокада предполагает введение растворов местных анестетиков до реализации оперативного приема в точке наиболее близкой локализации друг к другу яичниковых и краниальных маточных нервов, а именно в мезоварии вблизи яичниковой сумки. Техника инъекционного доступа для ее проведения, следующая: введенными через разрез брюшной стенки в полость шпателями или пальцами, яичниковая и маточная брыжейки и весь связанный с ними органокомплекс выводятся в просвет операционной раны оперативного доступа до легкого натяжения поддерживающей связки яичника соответствующей стороны тела, обнажая место перехода мезовария и дорсо-краниальной части мезометрия на яичник и краниальную часть рога матки. Затем иглой длиной 5-6 сантиметров, канюля которой соединена с переходником полихлорвиниловой трубки или канюлей шприца проводят вкол в толщу мезовария в непосредственной близости от яичниковой сумки и рога матки. Угол вкола 10-15 градусов к поверхности яичниковой брыжейки. Иглу медленно продвигают в мезовариальной рыхлой соединительной ткани на глубину 3-4 сантиметра, слегка от-клоняя от продольной оси (до 10 градусов) стремясь распространить анестетик на максимальную площадь яичниковой и краниальной части маточной брыжеек. У крупных собак целесообразно ввести раствор и интралигаментарно - в поддерживающую связку яичника. Инъецируют 1% раствор новокаина или лидокаина для обезболивания, либо 0,5% раствор новокаина с патогенетической целью. Доза в обоих случаях составляет от Змл. у мелких пород собак и до 15 мл раствора анестетика для крупных и гигантских пород с одной стороны тела. С противоположной стороны проводят те же манипуляции, сразу по завершении предыдущих. Время выжидания до наступления обезболивания составляет 3-4 минуты.

Патогенетический эффект выражался в нормализации основных клинических параметров у животных экспериментальной группы в течение первых 24 часов после операции. В течение всего последующего времени наблюдений (14 дней) эти показатели также оставались в пределах физиологической нормы. При этом у всех животных экспериментальной группы аппетит и двигательная активность наблюдались уже в раннем послеоперационном периоде в течение первых 48 часов. Попытки разлизывания и разгрызания кожных швов не были отмечены. У животных экспериментальной группы операционные раны зажили без осложнений по первичному натяжению.

Картина крови и динамика ее изменения также свидетельствовли о положительном высокоэффективном влиянии блокады на коррекцию послеоперационного состояния у животных экспериментальной группы. Скорость оседания эритроцитов, первона-чально в 1,5 раза превышавшая норму, нормализовалась к моменту повторного иссле-дования (на 3 сутки после операции). При этом уровень гемоглобина оставался умеренно высоким на протяжении всего периода наблюдений на фоне небольшой эритремии (до 9,7 млн/мкл), вызванной абсолютным эритроцитозом с преобладанием нормо-и гиперхромных клеток, а также ретикулоцитов. Эти факты, а также лейкограмма (регенеративный лейкоцитоз за счет увеличения сегментоядерных клеток с незначительным нейтрофильным сдвигом влево на фоне эозинофилии (до 11%) и лимфоцитоза (до 52%) и увеличение общего белка сыворотки крови в основном за счет гамма-глобулинов, служат доказательством высокой сопротивляемости организма экспериментальных животных, быстрого посттравматического восстановления на фоне усиления гемопоэза и клеточного иммунитета. Наиболее яркими эти изменения наблюдаются в ранний послеоперационный период, в первые 3-4 дня. Но и во время последующей реабилитации наблюдения свидетельствовали об усилении иммунобиологической реакции организма исследованных собак. При отсутствии дополнительного серьезного лечения подобный эффект мог быть обеспечен только влиянием интрамезовариальной блокады.

В контрольной группе первые признаки нормализации состояния у животных были отмечены на 2-3 дни после операции: снизилась температура, восстановились частота и качество пульса и дыхания. У части контрольных животных температура, пульс и дыхание пришли в норму на 4—9 дни послеоперационного периода. У одного на 10 день наблюдения после примененной антибиотикотерапии. У всех животных контрольной группы в первые 2 дня после операции отсутствовал аппетит (4 отказывались и от питья), отмечалась адинамия, вынужденные движения и позы. Нормализация аппетита и восстановление нормальной двигательной активности имели замедленную в сравнении с экспериментальными животными динамику от 2 до 10 дней. У всех контрольных животных отмечались регулярные попытки разлизывания и разгрызания кожных швов, которые приводили к развитию гнойно-лигатурных свищей, расхождению 2-3 стежков шва и глубокого серозно-гнойного дерматита вокруг него, в результате чего заживление кожной раны проходило по вторичному натяжению с формированием рубца.

Лабораторные исследования крови животных контрольной группы подтверждали клиническую картину. СОЭ нормализовалась не ранее 4 суток после операции. Уровень гемоглобина снижался до нормы лишь к 5-6 суткам после операции, причем это снижение не было постепенным, литическим и протекало при слабовыраженных анизохромии и анизоцитозе эритроцитов на фоне общей эритроцитопении.

Лейкограмма на фоне высокого лейкоцитоза также говорит о более тяжелом течении послеоперационного периода у большинства контрольных животных.

Лейкоцитарный профиль отличался нейтрофилией с резким регенеративным (в 10% случаев с дегенеративным) ядерным сдвигом влево: до 80% сегментоядерных - и до 15% палочко-ядерных нейтрофилов, среди которых встречались единичные дегенеративные формы.

В 4% случаев отмечался лимфоцитоз на фоне агранулоцитоза, что в купе с резким дегенеративным нейтрофильным сдвигом влево свидетельствует о тяжелом воспалении, а также о снижении фагоцитарной активности вследствие истощения кроветворения.

Обсуждение результатов

Интрамезовариальная блокада яичниковых и краниальных маточных нервов у собак проводится внутриоперационно в силу невозможности проведения точечного, узконаправленного воздействия на эти нервы в предоперационный период. Она позволяет безопасно и небольшой дозой анестетика провести обезболивание или патогенетическое лечение поддерживающей связки яичника, мезовария, яичниковой сумки, мезосальпинкса, истинной связки яичника, дорсокраниальной части мезометрия, яичника и краниальной части рогов матки, а также максимально достоверно мано-визуально контролировать положения иглы, ее направления и глубины вкола в любой момент введения. Важнейшим эффектом блокады служит возможность значительного увеличения мобильности яичников и матки при необходимости их эвакуации в просвет операционной раны в силу снижения болезненности этих манипуляций и расслабления мышечных элементов яичниковых связок и брыжейки в местах их прикрепления к дорсолатеральной брюшной стенке, а также гладкой мускулатуры рогов матки. Это, в свою очередь, позволяет не только безболезненно, но и максимально атравматично и провести такие хирургические манипуляции как отшивание связок и брыжейки яичников и матки, которые у собачьих малоподвижны в силу значительного развития жировых отложений в рыхлой соединительной ткани мезовария и мезометрия. Эти манипуляции являются основой оперативного приема и профилактики кровотечения при проведении овариоэктомии, гистерэктомии и овариогистерэктомии. Кроме того, последующий патогенетический эффект блокады во многом снижает риск послеоперационных воспалительных осложнений.

 Заключение

Предлагаемая нами техника внутриоперационного интрамезовариального инъекционного доступа безопасна как с точки зрения инъекционной травмы (абсолютно достоверный визуальный и пальпаторный контроль практически полностью исключает ее избыточность), так и в отношении возможности передозировки (для достижения клинического эффекта в силу точности доставки инъекта к объекту воздействия, требуется незначительное количество анестетика в 4-5 раз меньше чем при плоскостном орошении). Полученные результаты убедительно доказывают наличие положительного патогенетического эффекта интрамезовариальной блокады на течение и исход послеоперационного периода у собак, подвергшихся овариогистерэктомии.

Список литературы:

1. Афанасьев Ю.И. Основы гистологии и гистологической техники (Второе издание исправленное и  дополненное)   /  Ю.И.   Афанасьев,   В.К.   Баланчук, Л.Л. Ванников, Н.В. Донских, Е.Ф. Котовский, Т.Г. Оганесян, М.Я. Субботин, А.Ф. Суханов. М.: Медицина, 1967. - С. 268.

2. Болезни собак / А. Д. Белов [и др.] - 3-е изд. -М., 1994.-С. 368.

3. Кондрахин И.П. Клиническая лабораторная диагностикавветеринарии:Справочноеиздание/И.П.Кондрахин, Н.В. Курилов, А.Г. Малахов и др. - М.: Агропромиздат, 1985,-С. 287.

4. Магда И.И. Местное обезболивание / И.И. Магда. - М.: Сельхозгиз, 1955. - С.375-380. - (Руководство для ветеринарных врачей).

5. Мосин В.В. Новое в лечении незаразных болезней сельскохозяйственных животных / В.В. Мосин. - М.: Россельхозиздат, 1975. - С.30-32.

6. Паршин А. А. Хирургические операции у собак и кошек: монография / А. А. Паршин, В. А. Соболев,

B. А. Сазинов.-М.: Аквариум, 2003. - С. 232. - (Практика ветеринарного врача).

7. Пульняшенко П.Р. Анестезиология и реаниматология собак и кошек / П.Р. Пульняшенко - М.: «Аквариум», 2000. - С. 70.

8. Смирнов Л. Г., Решетняк В. В., Абрамова СП. Интраабдоминальный   способ   введения   новокаина и его действие на собак. // Актуальные проблемы науки в АПК. - Материалы юбилейной межвузовской научно-практической   конференции.   -   Кострома.- 20001.-Т. 1.-С. 145.

9. Старченков, С. В. Болезни мелких животных /C. В. Старченков- СПб.: Лань, 1999. - С. 236.

10. Шакалов К.И. Патогенетическая терапия заболеваний животных/ К.И. Шакалов. -М. — Л.: Сельхоз-издат, 1961.-С. 38-100.